авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ  БИБЛИОТЕКА

АВТОРЕФЕРАТЫ КАНДИДАТСКИХ, ДОКТОРСКИХ ДИССЕРТАЦИЙ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ

Клетки целомического эпителия морской звезды asterias rubens l., обладающие свойствами стволовых клеток

На правах рукописи

ШАРЛАИМОВА

Наталья Сергеевна

КЛЕТКИ ЦЕЛОМИЧЕСКОГО ЭПИТЕЛИЯ

МОРСКОЙ ЗВЕЗДЫ ASTERIAS RUBENS L.,

ОБЛАДАЮЩИЕ СВОЙСТВАМИ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК

03.03.04. – Клеточная биология, цитология, гистология

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени

кандидата биологических наук

Санкт-Петербург 2011 г.

Работа выполнена в Учреждении Российской академии наук Институт цитологии РАН, Санкт-Петербург кандидат биологических наук

Научный руководитель:

Петухова Ольга Александровна Институт цитологии РАН доктор биологических наук, профессор

Официальные оппоненты:

Подгорная Ольга Игоревна Институт цитологии РАН кандидат биологических наук Шапошникова Татьяна Григорьевна Санкт-Петербургский государственный университет Институт биологии моря

Ведущая организация:

им. А.В. Жирмунского ДВО РАН

Защита диссертации состоится «20» января 2012 года в 13 часов на заседании Диссертационного совета Д 002.230.01 при Институте цитологии РАН по адресу:

194064 Санкт-Петербург, Тихорецкий пр., д.4.

Адрес электронной почты Института: cellbio@mail.cytspb.rssi.ru Сайт: http//www.cytspb.rssi.ru Факс: 8 (812) 297-35-

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Института цитологии РАН

Автореферат разослан «» декабря 2011 г.

Ученый секретарь Диссертационного совета, кандидат биологических наук Е.В.Каминская

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность исследования Иглокожие, древнейшие представители группы Deuterostomia (Вторичноро тые), характеризуются повышенной способностью к восстановлению утраченных частей тела и являются излюбленным объектом для изучения механизмов регене рации. Предполагают, что процесс регенерации является комбинацией двух про цессов — эпиморфоза и морфаллаксиса (Morgan, 1901;

Короткова, 1997;

Moss et al.,1998;

Thorndyke et al., 2001;

Candia-Carnevali, 2006;

Rinkevich, Matranga, 2009).

Первый процесс предполагает восстановление утраченных тканей и органов за счет образования бластемы, состоящей из недифференцированных клеток, которые ин тенсивно делятся в зоне повреждения. Второй механизм заключается в миграции уже дифференцированных, либо малодифференцированных клеток из определен ных клеточных депо.

Процесс регенерации предполагает существование в организме стволовых клеток того или иного уровня (плюрипотентных, мультипотентных или унипотентных), присут ствующих в циркулирующих жидкостях или тканях в форме клеток-предшественниц, готовых принять участие в репарации или процессе регенерации. Признаками стволо вых клеток являются способность к пролиферации и дифференцировке в разнообраз ные линии клеток. Кроме того, стволовые клетки характеризуются малыми размера ми, высоким ядерно-цитоплазматическим отношением (отношением диаметра ядра к общему диаметру клетки) и отсутствием морфологических признаков цитодиффе ренцировки. Отмечают высокую теломеразную активность, незначительное количе ство в тканях и связь клеток с микроокружением, а также асимметричное деление. Су ществует также набор молекулярных маркеров, характеризующих стволовые клет ки (Candia-Carnevali, 2006;

Rinkevich, Matranga, 2009, Исаева и др., 2009;

Isaeva, 2011).

Темпы регенерации являются видоспецифичной характеристикой. Для морской звезды Asterias rubens L., характерны достаточно медленные темпы регенерации, однако существует одна тканевая система, способная к быстрому восполнению.

Это аналог кроветворной системы позвоночных животных — клетки целомиче ской жидкости (ЦЖ) — целомоциты (ЦЦ). Основная функция ЦЦ — защитная, они принимают участие в уничтожении патогенов, образовании тромба в области повреждения стенки тела, кроме того, им приписывают функции в регенерации утраченных органов. Восполнение клеточной популяции ЦЦ происходит достаточ но быстро — в течение 5–6 ч (Vanden Bossche, JanGoux, 1976). Механизмы этого процесса до сих пор не выяснены.

Для A. rubens показано, что пролиферативная активность ЦЦ находится на очень низком уровне и на ранних сроках после травмирования не увеличивает ся, таким образом, по-видимому, восполнение популяции ЦЦ проходит за счет миграции клеток из определенных клеточных депо (Moss et al., 1998). Полагают, что наиболее вероятным источником клеток ЦЖ является целомический эпи телий (ЦЭ). С использованием ферритиновой метки было показано, что при не скольких последовательных «кровопусканиях» происходит выход клеток из ЦЭ в целомическую полость (Vanden Bossche, JanGoux, 1976). Кроме того, согласно электронно-микроскопическим данным «зрелые» (дифференцированные) ЦЦ были обнаружены в составе ЦЭ (Cobb, 1978;

Schoenmakers et. al., 1981;

Горшков и др., 2009). Эти данные свидетельствуют в пользу преобладания морфаллакти ческих процессов в ходе быстрого восстановления популяции ЦЦ за счет мигра ции уже дифференцированных клеток из состава ЦЭ в целомическую полость.

Из литературных источников известно, что изменений состава клеточной попу ляции ЦЦ в ответ на травмирование не выявлено (Vanden Bossche, JanGoux, 1976;

Pinsino et al., 2007). Однако, в предыдущей работе, проведенной в нашей группе, было показано, что при определенном «тяжелом», травмировании, когда полость тела животных дополнительно промывается морской водой, происходит изменение клеточного состава популяции ЦЦ за счет увеличения доли малых клеток с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением (Козлова и др., 2006). Этот факт позволя ет предположить, что восполнение популяции ЦЦ может происходить не только за счет «зрелых», но и за счет малых клеток. Существуют также данные, что на ранних сроках регенерации у A. rubens пролиферативной активностью обладают клетки ЦЭ с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением (Moss et al., 1998).

Цели и задачи исследования Целью работы является морфофункциональная характеристика малых клеток ЦЖ и ЦЭ. Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследование пролиферативной активности клеток ЦЖ и ЦЭ с помощью ана лиза включения аналога тимидина — бромодезоксиуридина, а также после окраски антителами (АТ) на Н3-фосфогистон, являющегося маркером митотических клеток.

Анализ суспензий клеток ЦЖ и ЦЭ методом проточной цитофлуориметрии.

2. Гистологический анализ суспензий клеток ЦЖ и ЦЭ после окраски азур эозином, определение доли малых клеток в составе популяций;

динамика клеточ ного состава в ответ на травмирование.

3. Определение локализации малых клеток в составе ЦЭ, оценка способности к миграции из состава ЦЭ.

4. Исследование возможности культивирования клеток ЦЖ и ЦЭ.

Основные положения, выносимые на защиту 1. Пролиферативной активностью в составе ЦЖ и ЦЭ обладают малые клетки с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением — малые эпителиоциты (ЭЦ).

2. Малые ЭЦ выявлены как в составе популяции клеток ЦЖ, так и в составе популяции клеток ЦЭ, причем обнаружена новая субпопуляция клеток ЦЭ, обога щенная этим типом клеток. Малые ЭЦ способны выходить из состава ЦЭ в цело мическую полость.

3. Малые ЭЦ при культивировании сохраняют пролиферативную активность в течение длительного времени.

4. Малые ЭЦ обладают избирательным сродством к ламинину, белку внекле точного матрикса.

5. При культивировании клеток ЦЭ на ламинине наблюдается повышенная про лиферативная активность, которая сохраняется в течение длительного времени.

6. Малые клетки целомического эпителия проявляют черты стволовых клеток.

Научная новизна работы В работе впервые охарактеризован клеточный состав ЦЭ и описаны морфо функциональные свойства малых клеток ЦЖ и ЦЭ. В составе ЦЭ впервые об наружена новая субпопуляция клеток ЦЭ, обогащенная малыми эпителиаль ными клетками с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением, характе ризующимися дискретным распределением хроматина. Часть популяции кле ток этого типа обладает пролиферативной активностью, и, кроме того, по дан ным проточной цитофлуориметрии, часть популяции малых клеток в составе новой субпопуляции ЦЭ находится в G2 стадии клеточного цикла. Приоритет ными являются полученные данные, свидетельствующие о способности малых ЭЦ выходить в циркуляцию, что говорит о том, что восполнение популяции ЦЦ происходит не только за счет «зрелых» клеток, но и за счет клеток с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением. В работе выявлено обогащение попу ляции клеток малыми клетками при посадке на ламинин. Клетки ЦЭ и субпопу ляции клеток ЦЭ при культивировании на ламинине остаются жизнеспособны ми в течение длительного времени и формируют колоние-подобные агрегаты ма лых клеток, обладающих пролиферативной активностью. Малые ЭЦ окрашива ются АТ к транскрипционному фактору, маркеру стволовых клеток, Oct-4 in vivo и in vitro. Характеристики малых клеток свидетельствуют о том, что малые ЭЦ проявляют свойства стволовых клеток.

Теоретическое и практическое значение работы Работа имеет фундаментальную направленность. Полученные данные вносят существенный вклад в область изучения механизмов восполнения популяции ЦЦ в ответ на травмирование у морских звезд, а также предоставляют новый материал для сравнительного анализа эволюционного многообразия феномена регенерации.

Теоретические результаты могут быть использованы в курсах сравнительной ги стологии, зоологии беспозвоночных и биологии стволовых клеток.

Апробация работы По теме диссертации опубликовано 2 статьи в отечественных рецензируемых журналах, 2 статьи в материалах симпозиумов и 11 тезисов. Материалы диссер тации были представлены на Международной конференции «Стволовые клетки, регенерация, клеточная терапия», (Санкт-Петербург, 2004 г.), Всероссийском сим позиуме «Биология клетки в культуре», (Санкт-Петербург, 2006 г.), Двенадцатой и Тринадцатой Санкт-Петербургская ассамблеях молодых ученых и специалистов, (Санкт-Петербург, 2007 г. и 2008 г.), VIII, IX, Х и ХII научных сессиях Морской Биологической Станции Санкт-Петербургского Университета, (Санкт-Петербург, 2007, 2008, 2009 и 2011 гг.), Школе-конференции для молодых ученых «Методы культивирования клеток», (Санкт-Петербург, 2008 г.), Всероссийском симпозиу ме по биологии клетки в культуре «Культивируемые клетки как основа клеточных технологий» (Санкт-Петербург, 2009 г.), III и IV Всероссийских с международным участием конгрессах студентов и аспирантов-биологов «Симбиоз-Россия», (Ниж ний Новгород, 2010, Воронеж, 2011 г.), II Всероссийской конференции с между народным участием «Современные проблемы эволюционной морфологии живот ных» (Санкт-Петербург, 17–19 октября 2011 г.) и на научных семинарах Отдела клеточных культур Института цитологии РАН и ББС ЗИН РАН, мыс Картеш. Дис сертационная работа апробирована на научном семинаре Отдела клеточных куль тур Института цитологии РАН 29 июня 2011 г.

Объем и структура диссертации Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, результатов и их обсуждения, выводов и списка цитируемой литерату ры, включающего ссылки. Диссертация изложена на _ страницах. Иллюстратив ный материал содержит 35 рисунков и 8 таблиц.

Работа выполнена при финансовой поддержке гранта РФФИ (#7852.2006.4), научной программы СПб НЦ, грантов правительства Санкт-Петербурга для сту дентов, аспирантов вузов и академических институтов 2007 и 2008 гг. и грантом правительства Санкт-Петербурга в сфере научной и научно-технической деятель ности 2011 г.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Сбор экспериментального материала и часть экспериментов проводили в сен тябре 2005–2011 гг. на базе ББС ЗИН РАН (Кандалакшский залив, губа Чупа, мыс Картеш).

Объект исследования. Особей Asterias rubens L. (тип Echinodermata, кл. Asteroidea) диаметром 10–12 см собирали в районе о-ва Феттах и содержали в садках на глубине 3–5 метров в течение всего времени проведения эксперимен тов. Для анализа пролиферативной активности клеток исследуемых тканей in vivo при помощи анализа включения BrdU отбирали животных меньшего размера (диа метром 5–6 см) и содержали в термостатируемой комнате при +10 °С. В каждый эксперимент брали 4–6 особей A. rubens.

Условия травмирования животных. Звездам отрезали кончик луча, макси мально спускали ЦЖ, после чего полость тела животных промывали 10–15 мл филь трованной морской воды (Козлова и др., 2006). При таком травмировании в цело мической полости остается менее 10 % клеточных элементов. Выделение суспензий клеток проводили непосредственно после травмирования («травма0» или Т0), через 5 ч, 3 или 7 сут после травмирования (Т5 ч, Т3 сут и Т7 сут соответственно).

Выделение суспензий клеток ЦЖ, ЦЭ, а также субпопуляции клеток, слабо связанных с ЦЭ (ЦЭ-с). Суспензии ЦЦ контрольных и травмированных живот ных получали, отрезая кончик луча и спуская ЦЖ в пробирку с равным объемом CMFSS (солевой раствор без Ca2+ и Mg2+ (Kanungo, 1982): NaCl — 25,5 г;

KCl — 0,8 г;

Na2SO4 — 3 г;

HEPES — 2,86 г;

рН — 7,2-7,4, до 1 л Н2О дист.) с добавле нием ЭДТА до конечной концентрации 15 мкM для предотвращения образования агрегатов клеток. Для получения суспензий клеток ЦЖ-Т0 отбирали последние мл промывки полости тела морской водой, содержащие ЦЦ. Суспензии клеток ЦЭ выделяли методом ферментативной диссоциации (обработка 0,05–0,1 %-ным рас твором коллагеназы краба (Биолот, Россия) в течение 20 мин).

Суспензии клеток, слабо связанных с ЦЭ выделяли, собирая клетки, содержа щиеся в растворе CMFSS после первичной промывки фрагментов ЦЭ. Данная суб популяция клеток была рассмотрена отдельно и определена как популяция клеток, слабо связанных с ЦЭ (ЦЭ-с).

Суспензии клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с осаждали центрифугированием в течение 10 мин при 1800 об/мин и ресуспендировали в CMFSS. Дальнейшие манипуляции с клеточными суспензиями определялись характером каждого из последующих экспериментов — клетки либо фиксировали параформальдегидом (ПФА), добав ляя ПФА до конечной концентрации ПФА — 4 %), либо проводили эксперименты с живыми клетками (см. далее).

Анализ пролиферативной активности клеток in vivo осуществляли методом включения аналога тимидина — бромодеоксиуридина (BrdU). Эксперименты про водили в течение 3 сезонов.

Животным диаметром 5–6 см вводили BrdU за 5 ч до фиксации клеток (200 мкл раствора 10 мг/мл). Выделенные суспензии фиксировали 4 % ПФА в течение 10 мин, после чего сажали на полилизин (Пл) (Sigma, США) на 1 ч, обрабатыва ли 0,5 % Тритоном Х-100 и проводили гидролиз ДНК 2N HCl. Клетки инкубиро вали с АТ мыши к BrdU (BD Bioscience, США) (1:4) при +4 C в течение ночи.

Окраску вторыми АТ, коньюгированными с Alexa 488 Fluor, проводили в течение 1,5 ч. Для определения ядерной локализации BrdU клетки также окрашивались DAPI (Sigma).

Иммунофлуоресценция. Окраску суспензий, фиксированных 4 %-ным ПФА, АТ к Н3-фосфогистону, Oct-4 и тубулину проводили после посадки на Пл в тече ние 1 ч. Клетки пермеабилизировали 0,1 %-ным раствором Тритона Х-100, инку бировали с соответствующими первыми АТ в течение ночи при +4 °С и окрашива ли соответствующими вторыми АТ Alexa 488 в течение 1,5 ч при tкомн. Ядра окра шивали красителем DAPI.

Гистологический анализ суспензий клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с. Суспензии кле ток, фиксированные в 4 % -ном ПФА, наносили на Пл на 1 ч. и окрашивали азур эозином (0,1%-ым водным раствором азура II и 0,1%-ым спиртовым раствором эо зина). Выделяли различные классы, опираясь на морфометрические характеристи ки — диаметр и форму клетки, диаметр ядра, наличие или отсутствие гранул в ци топлазме, интенсивность окраски ядра и гранул красителями. Далее высчитывали долю каждого класса клеток.

Анализ возможности миграции клеток ЦЭ-с из состава ЦЭ. Вырезали або ральную часть луча и во внутреннюю часть заливали 2 мл CMFSS, морской воды или ЦЖ. Суспензии клеток, вышедших из состава эпителия, через 15 мин фикси ровали в ПФА. Была проведена оценка общего количества клеток (абсолютное ко личество на одну звезду) в разных субпопуляциях ЦЭ после подсчета клеток в ка мере Горяева и оценка доли малых клеток после окраски азур-эозином.

Анализ суспензий клеток методом проточной цитофлуориметрии. Суспен зии клеток фиксировали в 4 %-ном ПФА, обрабатывали 0,1%-ным Тритоном X-100, после чего окрашивали пропидий йодидом в концентрации 40 мкг/мл (Serva, Гер мания) с добавлением 0,25 мг/мл РНКазыА. Суспензии клеток анализировали при помощи цитофлуориметра Epics XL (Beckmаn Coulter). Обсчитывали не менее клеток. В качестве маркера для определения положения гаплоидного набора ис пользовали сперматозоиды A. rubens.

Определение локализации малых ЭЦ в составе ЦЭ проводили, анализируя случайно выбранные фрагменты контрольного ЦЭ методами окраски полутонких срезов метиленовым синим и иммунофлуоресцентного анализа тотальных препа ратов после окраски АТ к тубулину (whole-mount) (Ott, 2008).

Культивирование клеток ЦЖ и ЦЭ. Суспензии клеток дважды промывали раствором CMFSS, содержащем коктейль антибиотиков (пенициллин — 200 ед/мл, стрептомицин — 200 мкг/мл, гентамицин — 40 мкг/мл) и ресуспендировали в мо дифицированной среде Лейбовича L-15 (Odintsova, Khomenko, 1993) (1100 мосм) с добавлением 2 % эмбриональной телячьей сыворотки (Биолот, Россия) и гентами цина (40 мкг/мл). Клетки в концентрации 1–2106 клеток в мл сеяли в 24-луночные платы, флаконы (Nunc, 25 см2, США) и одновременно на стекла диаметром 13 мм (Menzel-Glaser, Германия).

Анализ пролиферативной активности клеток в культуре. Для анализа в лунку с 0,5 мл среды добавляли раствор BrdU до конечной концентрации 20 мкM и инкубировали в течение 12 ч. Оценку уровня включения BrdU определяли в сум марной клеточной суспензии, полученной после сбивания клеток с поверхности лунок с помощью пипетирования через 12 ч, 5 и 15 сут, а также через 2 мес куль тивирования. При культивировании клеток на ламинине оценку уровня включения BrdU определяли как для прикрепленных, так и неприкрепленных к ламинину кле ток, через 12 ч, 5 сут, а также через 1 мес культивирования.

Выбор субстрата для культивирования. Морфологию прикрепленных и рас пластанных клеток ЦЖ и ЦЭ анализировали после посадки на иммобилизованные лиганды — фибронектин (Фн), ламинин 2/4 (Лм) и на неспецифические субстра ты — полилизин (Пл) и стекло (Ст). Сравнивали количество клеток, способных прикрепиться к тому или иному субстрату.

Нанесение лигандов на стекла. Фн (Sigma, США), Лм, любезно предостав ленный И.В. Воронкиной (ИНЦ РАН), а также Пл (Sigma, США) наносили на покровные стекла диаметром 13 мм (Menzel-Glaser, Германия) в концентрации 20 мкг/мл и инкубировали при 4 °С в течение ночи. Затем стекла отмывали рас твором CMFSS, инкубировали в растворе 1 % BSA при 37 °С в течение 1 ч и вновь отмывали раствором CMFSS.

Распластывание клеток на различных субстратах, окраска препаратов родамин-фаллоидином и DAPI. 100 мкл суспензий клеток (1106 в мл для ЦЦ и 2106 в мл для суспензии клеток ЦЭ) наносили на покровные стекла, на стек ла, покрытые лигандами или Пл, и выдерживали при температуре +16 °С в тече ние 1 ч. Прикрепившиеся и распластанные клетки фиксировали 4 %-ным ПФА, пермеабилизовали 0,1 %-ным раствором Тритона Х-100, после чего окрашивали родамин-фаллоидином (Invitrogen, США) и DAPI.

Для качественного анализа выделяли несколько условных классов клеток в за висимости от размера и формы клеток, структуры, размера и интенсивности свече ния ядер после окраски DAPI, а также структуры актинового цитоскелета, и под считывали количество клеток, принадлежащих к данному классу. Интенсивность окраски ядер, выраженную в процентном отношении содержания синего цвета на снимках препаратов, определяли с помощью программы ImageJ.

Культивирование клеток ЦЭ на Лм. Суспензии клеток, дважды отмытые в CMFSS с коктейлем антибиотиков ресуспендировали в стерильной морской воде.

Клетки в концентрации 1–2106 клеток в 1 мл (суммарно 1 мл) сеяли в 24-луночные платы на покровные стекла, покрытые Лм. Через 1 ч инкубации при +16 °С, уда ляли не прикрепившиеся клетки и лунки мягко промывали стерильной морской водой, после чего в каждую лунку добавляли 500 мкл среды Лейбовича L-15.

Микроскопия. Препараты, окрашенные азур-эозином и метиленовым синим анализировали с помощью светового микроскопа Axioscop или Pascal (об. 100). На блюдения за состоянием и поведением клеток в культуре проводили с использовани ем инвертированного микроскопа Биолам (Россия) и Nicon (Германия) (об. 6,3, и 20). Иммунофлуоресцентные препараты анализировали с помощью конфокаль ного микроскопа Leica TCS SP5 (об.63 и 100). Для возбуждения флуоресценции использовали аргоновый лазер с длиной волны 488 нм для вторых антител Alexa 488;

HeNe-лазер с длиной волны 543 нм для Alexa 568 и родамин-фаллоидина и полупро водниковый лазер с длиной волны 405 нм для визуализации окраски DAPI. В случае тройной окраски применяли последовательное сканирование.

Статистическая обработка результатов. Для статистической обработ ки данных были использованы компьютерные программы STATISTICA 6. (StatSoft Inc.) и Microsoft Excel. Подсчет долей клеток (после окраски BrdU, АТ к Н3-фосфогистону, а также доли клеток каждого типа при гистологическом анализе и после окраски прикрепленных клеток родамин-фаллоидином) прово дили в нескольких случайных полях зрения таким образом, чтобы общее коли чество подсчитанных клеток было не менее 300. Значимость различий оценивали с вероятностью 0,05 при помощи пакета однофакторного дисперсионного анали за ANOVA с использованием критерия множественного сравнения Фишера (Fisher post-hoc test) (Winer et al. 1991).

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ Пролиферативная активность клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с in vivo. Анализ вклю чения BrdU в клетки ЦЖ показал, что ДНК-синтетическая активность ЦЦ очень мала — обнаруживали лишь единичные ЦЦ, включающие BrdU, причем, доля этих клеток в составе ЦЖ не увеличивалась в ответ на травмирование. Включение BrdU в клетки ЦЭ наблюдали стабильно в течение трех сезонов, их доля не превышала 0,3 %. Воспроизводимых изменений в ответ на травмирование не выявлено. Доля клеток, включающих BrdU в суспензии клеток ЦЭ-с, составляла не более 0,2 % и также не изменялась.

Анализ морфологии ЦЦ, включающих BrdU показал, что, главным обра зом, включения обнаруживали в малые клетки (d = 4 мкм) с высоким ядерно цитоплазматическим отношением, близким к единице (рис. 1, А). В очень редких случаях наблюдали включения и в клетки с видимой цитоплазмой.

В суспензиях клеток ЦЭ и ЦЭ-с включения BrdU обнаруживали в двух типах клеток (рис. 1 Б, а, б): 1. малые, с высоким ядерно-цитоплазматическим отноше нием, дискретно окрашенным DAPI ядром и примембранным прилежанием хро матина (малые эпителиоциты (ЭЦ) 1 типа) (d = 4–6 мкм);

2. малые клетки с плотно окрашенным DAPI ядром (конденсированный хроматин) и, иногда, с небольшой ви димой цитоплазмой (малые ЭЦ 2 типа) (d = 2–3 мкм). Согласно морфометрическим характеристикам и характеру окраски ядер DAPI, имен но малые клетки типа с включения Рис. 1. Включение BrdU (зеленый) в клетки ЦЖ и ЦЭ: А — ЦЦ;

Б — клетки ЦЭ, включающие BrdU двух типов: а — малые ЭЦ с дискретно окрашенным DAPI (синий) ядром;

б — малые ЭЦ с плотно окрашенным DAPI ядром. DIC — дифференциальный контраст ми BrdU обнаруживали в составе по пуляции клеток ЦЖ.

Несмотря на то, что включение BrdU или Н3-тимидина считается до статочным аргументом для доказа тельства пролиферативной активно Рис. 2. Клетки ЦЭ после окраски антитела- сти (Moss et al., 1998, Carnevali et al., ми к Н3-фосфогистону (зеленый) и DAPI (синий);

2001;

Одинцова, 2009), мы посчита DIC — дифференциальный контраст ли необходимым проанализировать митотическую активность клеток, окрашивая суспензии АТ на Н3-фосфогистон, который является маркером мито тических клеток (Hendzel et al., 1997). Окраска обнаруживалась лишь в единичных ЦЦ. В ЦЭ окрашивались малые ЭЦ с высоким ядерно-цитоплазматическим отно шением (рис. 2). Доля окрашенных клеток составляла не более 0,05 % и также не изменялась после травмирования.

Таким образом, способность включать BrdU, а также окрашиваться АТ к Н3 фосфогистону — характеристика малых клеток ЦЖ и ЦЭ, обладающих высоким ядерно-цитоплазматическим отношением.

Гистологический анализ суспензий клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с после окраски азур-эозином, определение доли малых клеток в составе популяций. Вышеиз ложенные данные показали необходимость более детально исследовать популяции клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с, чтобы определить долю малых клеток и их распределение в составе популяций, а также изменение их доли в ответ на травмирование. Точка Т введена для того, чтобы проконтролировать степень вымывания ЦЦ и выяснить, как процедура вымывания влияет на состав популяций клеток ЦЭ. Среднее суммарное количество ЦЦ на одну звезду диаметром 8–10 см, для контрольных животных (n = 4) составляет около 30 млн, а в 2 последних мл промывки 2–3 млн клеток.

Анализ популяции клеток ЦЖ. Общепринятой классификации ЦЦ иглокожих в настоящее время не существует. Описания структуры ЦЦ и их классификация, предлагаемая разными авторами, значительно зависят от методических особенно стей (оптический или электронно-микроскопический уровень исследования, вы бранный метод фиксации, изучение клеток в прикрепленном состоянии или в су спензионном состоянии). Доминирующим типом клеток в составе ЦЖ называют амебоцитами или фагоцитами (Smith, 1981;

Коренбаум, Воробьев, 1988;

Pinsino Рис. 3. Типы ЦЦ после окраски азур-эозином (А) и динамика клеточного состава ЦЖ в ответ на травмирование (Б): А — типы ЦЦ: 1 — малые ЦЦ с дискретно окрашенным ядром;

2 –малые ЦЦ с «плот ным» ядром;

3 — мелкие агранулоциты;

4 — крупные агранулоциты;

5 — эозинофильные гранулоциты;

6 — удлиненные ЦЦ;

7 — двуядерные ЦЦ;

Б — динамика состава популяции ЦЦ в ответ на травмирование et. al., 2007), лимфоцитами (JanGoux and Vanden Bossche. 1975) или агранулоцита ми (Козлова и др., 2006). В настоящей работе предложена собственная классифи кация ЦЦ после окраски суспензий клеток азур-эозином.

Выделено 7 условных классов клеток ЦЖ — малые клетки двух типов, мел кие и крупные агранулоциты, гранулоциты, веретеновидные и многоядерные ЦЦ (рис. 3). Доминирующими типами ЦЦ являются гранулоциты и агранулоциты. Гра нулоциты характеризуются слабоокрашенным ядром (dn= 4 мкм) и наличием двух и более эозинофильных гранул по цитоплазме (dcyt= 8–12 мкм). В ответ на исто щение ЦЖ наблюдается значительное увеличение доли гранулоцитов к 5 ч и вос становление до контрольного уровня к 7 сут после травмирования. Показано, что ЦЦ осуществляют синтез биологически активных веществ, имеющих защитное и регуляторное значение (Patruno et al., 2001;

Pinsino et al., 2007;

Holm et al., и др.), таким образом, изменение доли гранулоцитов, по-видимому, связано с отве том на травмирование. Описаны агранулоциты двух типов — мелкие (dn=3,3–4,2;

dcyt=5–6,5 мкм) и крупные (dn= 3,3–4;

dcyt=7–11 мкм), оба типа характеризуются азурофильным ядром и петалоидной формой. Агранулоциты имеют сложную ди намику — наблюдается значительное увеличение доли крупных агранулоцитов в точке Т0, что может быть связано с более медленным «вымыванием» этих клеток из целомической полости. Двуядерные и веретеновидные ЦЦ представлены в не значительной доле (рис. 3, Б, 6, 7), последние были обнаружены и другими автора ми (JanGoux, Vanden Bossche, 1975).

Наиболее интересующий класс ЦЦ — малые ЦЦ. Выявлено 2 типа малых кле ток — клетки, имеющие дискретно окрашенное азуром ядро (d=4 мкм) (рис. 3, Б, тип 1) и клетки с «плотно» окрашенным азуром ядром (d = 4 мкм) (рис. 3, Б, тип 2).

Как показано ранее, включение BrdU наблюдали именно в клетки с дискретно окрашенным ядром. Для обоих типов малых клеток показано значительное умень шение их доли в точке Т0 — в последней фракции промывки полости тела жи вотных с последующим увеличением их доли уже через 5 ч после трамирования.

Появление малых клеток обоих типов уже через 5 ч при очень низкой пролифера тивной активности ЦЦ свидетельствует о том, что эти клетки могут мигрировать из определенных клеточных депо.

Таким образом, мы подтвердили ранее полученные данные, демонстрирующие увеличение доли малых клеток в ответ на травмирование (Козлова и др., 2006), одна ко нам удалось выделить 2 типа малых ЦЦ с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением размером около 4 мкм, различающихся по структуре ядра.

Анализ популяции клеток ЦЭ после окраски суспензий клеток ЦЭ азур-эозином проведен впервые. Главная задача заключалась в определении состава и выявлении доли клеток того или иного типа. Выделено 7 типов клеток: доминирующие мелкие агранулоциты ЦЭ (38 %;

dn= 2,5–3,5;

dcyt=3–5 мкм), которые впоследствии были иденти фицированы как жгутиковые клетки ЦЭ после окраски АТ к тубулину (рис. 4, А, 3, Б);

крупные агранулоциты (рис. 4, А, 4) (11 %;

dn=3,3–4;

dcyt=7–10 мкм);

крупные эозино фильные гранулоциты (рис. 4, А, 5, 6) (15 % dn=3,3–4;

dcyt=8–11 мкм);

азурофильные гранулоциты (рис. 4, А, 5) (8 %;

dn=3,3–4;

dcyt=6–7 мкм) малые ЭЦ с высоким ядерно цитоплазматическим отношением двух типов (рис. 4, А, 1а, 1б), а также морулярные ЭЦ (2 %;

dn= 3,5–5;

dcyt= 10–14 мкм) и безъядерные элементы (рис. 4, А, 7). Выявле но, что безъядерные элементы окрашиваются родамин-фаллоидином или АТ к тубу лину, демонстрируют сложную структуру актинового или тубулинового цитоскелета.

Рис. 4. Клетки ЦЭ после окраски азур-эозином: А — 1а, 1б:

малые ЭЦ с дискретно окрашен ным ядром;

2 –малые ЭЦ с плотно окрашенным ядром;

3 — мелкие агранулоциты ЦЭ;

4 — крупные агранулоциты;

5 — азурофильные гранулоциты;

6 — эозинофильные гранулоциты;

7 — морулярные клетки;

Б — идентификация малых агранулоцитов после окраски АТ на тубулин (зеленый) и DAPI (синий).

Крупные агранулоциты и эозинофильные гранулоциты имеют сходные морфо метрические характеристики с агранулоцитами и гранулоцитами ЦЖ.

Выявлены малые ЭЦ двух типов. Малые ЭЦ 1 типа (5 %) характеризуются дис кретно окрашенным ядром диаметром 4 мкм. Малые ЭЦ 2 типа (21 %) характери зуются «плотным» ядром и диаметром 2–3 мкм. Для обоих типов характерно зна чительное уменьшение их доли в точке Т0, что предполагает их «вымывание» при процедуре промывки животных. Уже через 5 ч доля малых ЭЦ восстанавливается до контрольного уровня и сохраняется до 7 сут после травмирования.

Морфометрические характеристики малых ЭЦ 1 типа после окраски азур эозином и DAPI, а также их доля в составе популяций, говорят о том, что это тот же тип клеток, которые могут включать BrdU.

Анализ популяции клеток ЦЭ-с. В популяции клеток ЦЭ-с присутствуют те же типы клеток, которые наблюдали в составе популяций клеток ЦЭ, но в других со отношениях долей. Привлекают внимание крупные агранулоциты и эозинофиль ные гранулоциты, присутствие которых показано в составе ЦЖ — их доля изменя лась в ответ на травмирование.

Самым важным результатом является факт обогащения этой субпопуляции ма лыми ЭЦ – доля малых ЭЦ 1 типа с дискретно окрашенным ядром составляет 50%, что значительно превышает долю малых ЭЦ в составе ЦЭ, а доля клеток 2 типа со ставляет 20 % в контроле. Следует отметить, что в точке Т0 показано значитель ное уменьшение доли малых ЭЦ 1 типа, увеличение через 5 ч и снижение через 3 и 7 сут после травмирования. Доля малых ЭЦ 2 типа подвержена меньшим изме нениям (рис. 5).

Рис. 5. Клетки ЦЭ-с после окраски азур-эозином (А) и динамика клеточного состава в от вет на травмирование (Б): 1 — малые ЭЦ с дискретно окрашенным ядром;

2 – малые ЭЦ с плотно окрашенным ядром;

3 — мелкие агранулоциты ЦЭ;

4 — крупные агранулоциты;

5 — азурофильные гранулоциты;

6 — эозинофильные гранулоциты;

7 — морулярные клетки Таким образом, в составе популяций клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с выявлены типы клеток, обладающие сходными морфометрическими характеристиками — круп ные агранулоциты, гранулоциты и малые ЭЦ 1 типа. Изменения в составе популя ций клеток ЦЖ и ЦЭ в ответ на травмирование касались именно этих типов — ма лых ЭЦ 1 типа и крупных агранулоцитов и гранулоцитов. В составе ЦЭ обнаруже на новая субпопуляция клеток, слабо связанных с ЦЭ, обогащенная малыми клет ками двух типов, доля которых изменяется в ответ на травмирование. Только часть популяции малых ЭЦ проявляет пролиферативную активность.

Оценка возможности миграции малых эпителиоцитов из «условно интактного» эпителия. Поскольку выделение субпопуляции клеток ЦЭ-с связа но непосредственно с повреждением ЦЭ, встает вопрос, не является ли это резуль татом травмирования — клетки из фрагмен тов эпителия могли выходить из краевых ра невых частей в солевой раствор при отделе нии ЦЭ. Второй вопрос — не связан ли вы ход клеток ЦЭ с тем, что фрагменты промы вались CMFSS — морской водой, не содержа щий Са2+ и Мg2+. Поэтому, мы проверили, мо гут ли клетки свободно покидать ткань в слу чае, если ЦЭ травмируется незначительно.

Приблизительная оценка количества клеток (абсолютное количество на одну звезду) в разных субпопуляциях ЦЭ и ЦЖ показывает, что клетки могут выходить во Рис. 6. Соотношение малых клеток все предложенные жидкости, максималь- двух типов при разных способах выделения ное количество в CMFSS (6 млн) и пример- субпопуляции клеток ЦЭ-с: светлые столби но одинаковое количество в морскую воду ки — малые эпителиоциты с дискретно окра и ЦЖ (2,5 млн) при исходном суммарном шенным ядром;

темные столбики — малые эпителиоциты с «плотно» окрашенным ядром количестве клеток в ЦЖ 11 млн.

Анализ состава этих клеточных популя ций после окраски азур-эозином показал, что в «условно-интактных» ситуациях только малые ЭЦ с дискретно окрашенным ядром (1 типа) выходят из состава ЦЭ.

Их доля составляет около 60 % среди клеток, выходящих в CMFSS и в морскую воду, и около 40 % клеток, выходящих в ЦЖ, тогда как клетки с плотно окрашен ным ядром выявлены в суспензиях, выделенных при значительном травмировании ткани (рис. 6).

Таким образом, именно малые ЭЦ 1 типа с дискретно окрашенным ядром спо собны выходить из состава эпителия в целомическую полость.

Анализ суспензий ЦЭ и ЦЭ-с клеток методом проточной цитофлуориме трии после окраски пропидий йодидом показал, что в составе популяций присут ствуют 2 группы клеток — клетки меньшего и большего размера. Доля малых ЭЦ в каждой популяции клеток согласуется с подсчетами, полученными ранее при ги стологическом анализе и, в случае ЦЭ-с, составляет около 50 % (рис. 7). Кроме того, показано, что часть популяции малых клеток в составе субпопуляции ЦЭ-с находятся в G2 стадии клеточного цикла.

Определение локализации малых ЭЦ в составе ЦЭ. Выявление субпопуля ции клеток ЦЭ, обогащенной малыми ЭЦ 1 типа показало необходимость опре Рис. 7. Анализ популяций клеток ЦЭ (а) и ЦЭ-с (б) методом проточной цитофлуориметрии (стрелками указаны положения диплоидного и тетраплоидного набора) деления локализации этих клеток в составе ЦЭ. На полутонких срезах ЦЭ видны 3 зоны локализации малых ЭЦ 1 типа: 1. как единичные клетки в слое соедини тельной ткани;

2. в участках целомического эпителия, обедненных жгутиковыми клетками;

3. как скопления клеток в свободных от ресничного эпителия участках (рис. 8). Окрашивание фрагментов ЦЭ АТ к тубулину и DAPI на тотальных препа ратах (whole-mount) подтверждают, что малые клетки ЦЭ локализуются в участках ЦЭ, обедненных жгутиковыми клетками (рис. 9).

Культивирование клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с. Одним из методов, моделирую щих процессы, происходящие in vivo, в частности, процессы дифференцировки и трансдифференцировки клеток, является метод культивирования. Несмотря на то, что постоянных клеточных культур морских беспозвоночных до сих пор не су ществует, широко используются первичные культуры клеток различных тканей (Naganuma et al., 1994;

Ермак, Одинцова, 1996). Для получения модели, позволяю щей исследовать закономерности восполнения популяции клеток ЦЖ после трав мирования и дифференцировку ЦЦ in vitro, были отработаны методы выделения и культивирования клеток на разных сроках после «тяжелого» травмирования жи Рис. 8 Локали зация малых кле ток в составе ЦЭ.

Окраска полутонких срезов метиленовым синим: а — малые клетки ЦЭ в слое со единительной ткани;

б — малые клетки в участках ЦЭ, обе дненных жгутиковы ми клетками;

в — скопления малых клеток в участках ЦЭ, обедненных жгутиковыми клетками. ЖК — жгу тиковые клетки;

СТк — соединительная ткань;

;

СЭЦ-1 — скопления ЭЦ 1 типа Рис. 9. Локализация малых клеток ЦЭ в участках, обедненных жгутиковыми клетками по сле окраски тотальных препаратов (whole-mount) АТ к тубулину (зеленый): А — участок ЦЭ, со ставленный жгутиковыми клетками;

Б — участок ЦЭ, обедненный жгутиковыми клетками. Стрелками указаны ядра разных типов в различных участках ЦЭ после окраски DAPI (синий) вотных, а также проведен анализ поведения и пролиферативной активности кле ток в культуре.

Показано, что поведение ЦЦ и клеток ЦЭ в культуре зависело от срока, прошед шего после травмирования животных, на котором были выделены клетки. Клет ки ЦЖ, выделенные через 5 ч после травмирования формируют «сети» и агрега ты (рис. 10, А, б). Клетки, выделенные от контрольных животных, а также через и 7 сут после травмирования подобной активности не проявляли (рис. 10, А, а).

Через 1 сут после посева ЦЦ, выделенные на всех сроках, формировали «сети», которые распадались к 3 сут культивирования, кроме ЦЦ точки Т5ч, которые фор мировали синцитии. Через 2 мес поддержания в условиях культуры большая часть клеток погибала — значительная часть клеток имеет фрагментированные ядра или является безъядерными (рис. 10, А, в).

Для клеток ЦЭ, выделенных из контрольных животных, наблюдали формиро вание сетеподобных структур уже через 12–24 ч после посева (рис. 10, Б, а), в то Рис. 10. Первичные культуры ЦЦ и клеток ЦЭ: А — ЦЦ: а — клетки, выделенные от контрольных животных через 12 ч культивирования;

б — клетки, выделенные через 5 ч после травмирования;

в — клетки через 2 мес культивирования после окраски DAPI (суммарная суспензия, полученная после мяг кого сбивания клеток с поверхности культуральных сосудов пипетированием), стрелками указаны клетки с целостными ядрами (1), с фрагментированными ядрами (2) и безъядерные клетки (3);

Б — клетки ЦЭ в культуре: а — клетки, выделенные от контрольных животных через 12 ч культивирования: 1 — агрегат ресничных клеток;

2 — хорошо распластанные клетки, формирующие «сети»;

3 — малые ЭЦ на по верхности распластанных клеток;

б — клетки ЦЭ через 2 мес культивирования, формирование колоние подобных агрегатов;

в — включение BrdU в клетки ЦЭ через 2 мес культивирования (зеленый) время как клетки, выделенные от травмированных животных, приобретали спо собность к сетеобразованию лишь на 7–12 сут культивирования. По-видимому, мы наблюдали процессы, моделирующие эпителизацию раны и смену функциональ ного состояния клеток, вызванного травмированием. Через 2 мес часть клеток по гибала, но на этом фоне, для клеток ЦЭ было характерно образование колоние подобных агрегатов клеток с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением (рис. 10, Б, б). Анализ ДНК-синтетической активности клеток ЦЭ после введе ния BrdU через 2 месяца культивирования показал, что доля клеток, включающих BrdU, составляет 5 %, причем эти клетки характеризуются высоким ядерно цитоплазматическим отношением (рис. 10, Б, в).

Выбор субстрата для культивирования. Результаты, описывающие поведе ние клеток in vitro, были получены при культивировании на поверхности гидро фильных плат и флаконов. В ходе работы было выявлено, что поверхность стекла является неподходящим субстратом для культивирования клеток A. rubens. Клетки, первоначально прикрепившиеся к покровному стеклу, через 1 сут культивирова ния мигрировали на поверхность лунки, не давая возможность проведения их им мунофлуоресцентного анализа. Таким образом, встал вопрос выбора субстрата для культивирования клеток ЦЖ и ЦЭ. Помимо этого, было необходимо охарактеризо вать типы клеток, с которыми мы можем встретиться при культивировании.

Был проведен сравнительный анализ количества клеток, прикрепившихся к фи бронектину (Фн), ламинину (Лм), полилизину (Пл) или стеклу (Ст) через 1 ч после на несения суспензий клеток на подложки. Аналоги Фн и Лм человека были обнаруже ны у морского ежа (Sea Urchin Genome Sequencing Consortium, 2006), поэтому мы соч ли возможным использовать эти лиганды. Пл и Ст использовали в качестве неспец ифических подложек. Клетки окрашивали родамин-фаллоидином и DAPI. Количе ственный анализ популяций клеток, прикрепленных к той или иной подложке пока зал, что ЦЦ проявляют предпочтение к специфическим лигандам, Фн и Лм, а клетки ЦЭ и ЦЭ-с — к Пл.

На основании морфометрических характеристик были описаны условные классы прикрепленных клеток. Выделено 7 условных классов ЦЦ и 8 классов клеток ЦЭ и ЦЭ-с. Выявлено 3 класса клеток, имеющих сходные морфометри ческие характеристики во всех популяциях клеток (рис. 11). Один из этих клас сов — крупные клетки с фибриллами актина в цитоплазме, бледно окрашенным ядром диаметром 3–4,4 мкм и диаметром цитоплазмы 12–38 мкм (рис. 11, А, а).

Последний параметр варьировал в зависимости от субстрата, что отражает раз ную способность к распластыванию на различных субстратах. Клетки этого типа выявлены на всех предложенных подложках, причем, для суспензий клеток всех исследуемых тканей, наиболее предпочтительным субстратом является Фн. Дру гой тип — малые клетки с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением, ко торые не окрашиваются родамин-фаллоидином. Для ЦЖ и суспензий ЦЭ-с харак терны 2 типа окраски ядра — дискретно окрашенные и плотно окрашенные DAPI (рис. 11, А, б, в), в то время как для малых ЭЦ структура ядра после окраски DAPI значительно различалась (рис. 11, Б).

Самой яркой характеристикой малых клеток ЦЭ и ЦЭ-с является избиратель ное прикрепление к Лм в контроле и через 5 ч после травмирования (до 70 % в за висимости от препарата Лм, по данным экспериментов разных лет) (рис. 12, а–в), в то время как суммарно к Лм прикрепляется незначительное количество клеток, Рис. 11. Типы клеток, выявленные в составе по пуляций прикрепленных клеток ЦЖ, ЦЭ и ЦЭ-с после посадки на Фн, Лм, Пл и Ст, имеющие сходные морфоме трические характеристики:

А: а — хорошо распластанные клетки с фибриллами актина и светлым ядром;

б — малые клетки с плотно окрашен ным DAPI ядром;

в — малые клетки с дискретно окрашен ным DAPI ядром;

Б (а–г) — структура малых клеток ЦЭ.

Красная окраска — родамин фаллоидин;

синяя окраска — DAPI Рис. 12. Обогащение популя ции клеток ЦЭ через 1 ч прикре пления Лм: а — клетки ЦЭ на Пл;

б — клетки ЦЭ на Лм;

в — малые клетки с дискретно окрашенным DAPI ядром на Лм. Красная окра ска — родамин-фаллоидин;

синяя окраска — DAPI.

по сравнению с другими субстратами (17% от количества клеток в одном поле зре ния, прикрепляющихся к Пл). Такая избирательная адгезия свидетельствует о вы сокой специализации этих клеток. Высокая доля малых ЭЦ с дискретно окрашен ным ядром на Лм после посадки суспензий клеток ЦЭ-с сохраняется и через 3 сут после травмирования.

В ответ на травмирование происходит изменение доли прикрепленных крупных кле ток с фибриллами актина и ма лых клеток во всех исследуе мых популяциях, что говорит об изменении свойств поверх ностных рецепторов клеток, от вечающих за взаимодействие с предложенны3ми субстратами.

Избирательное прикрепле ние малых ЭЦ к Лм и изме нение их адгезивных свойств, Рис. 13. Клетки ЦЭ при культивировании на Лм: А: а — вызванное травмировани ем, может свидетельствовать сут. в культуре;

б — 1 мес. культивирования. Стрелками указаны колоние-подобные агрегаты и «сети» эпителиоцитов;

Б: а, б — о тонких взаимоотношениях иммунофлуоресцентный анализ колоние-подобных агрегатов, Лм, белка базальных мембран, состоящих из малых клеток ЦЭ через 5 сут культивирования;

и малых клеток. Из литератур- в — малые клетки ЦЭ на поверхности хорошо распластанных ных источников известно, что ЦЦ-подобных клеток, 8 сут культивироваиня. Окраска родамин фаллоидином (красный) и DAPI (синий).

Лм является ключевым белком в развитии у морских ежей: в момент гаструляции предшественники мезенхимных клеток приобретают способность прикрепляться к Лм (Katow, 1986;

Hertzler, McClay, 1999). Клетки в этот момент характеризуют ся высоким ядерно-цитоплазматическим отношением, что является одной из черт стволовых клеток (Rinkevitch, 2009;

Исаева и др., 2009;

Isaeva, 2011).

Культивирование клеток ЦЭ и ЦЭ-с на ламинине. Клетки ЦЭ и ЦЭ-с, нане сенные на стекла, покрытые Лм, не мигрируют на пластик и остаются жизнеспо собными в течение 1–2 мес. Уже на 5 сут культивирования клетки формировали колоние-подобные агрегаты (рис. 13, А). Иммунофлуоресцентный анализ прикреплен ных клеток показал, что агрегаты состоят из малых клеток ЦЭ 1 типа с дискретно окрашенным ядром диаметром 4 мкм, причем на 5 сут клетки могут окрашиваться родамин-фаллоидином в виде небольшого ободка F-актина (рис. 13, Б, а, б). На бо лее поздних сроках малые ЭЦ обнаруживаются на поверхности хорошо распластан ных клеток (рис. 13, Б, в). Агрегаты сохранялись в течение всего периода содержания ЭЦ в культуре. Кроме того, наблюдали образование «сетей» клеток ЦЭ, которые так же сохранялись на стеклах, покрытых Лм на протяжении длительного времени (рис.

13, А, б). Клетки ЦЭ-с при культивировании на Лм вели себя аналогичным образом.

Анализ пролиферативной активности проводили как для прикрепленных к Лм клеток, так и клеток, открепившихся в процессе культивирования (рис. 14, А, Б). Через 12 ч культивирования прикрепленные к ламинину клетки проявляют ДНК-синтетическую активность на более высоком уровне, чем наблюдали in vivo, доля этих клеток составляла 7,7–9,9 % (рис. 14, В, а). Через 5 сут культивирова ния доля клеток, включающих BrdU, составляет 20–35 %, причем высокая доля со храняется, по крайней мере, в течение месяца. На этот момент клетки обнаружи Рис. 14. ДНК-синтетичес кая активность клеток ЦЭ при культивировании на ла минине: А — включение BrdU в клетки ЦЭ (зеленый), при клепленные к Лм через 12 ч (а), 5 сут (б) и 1 мес (в) культиви рования;

Б — включение BrdU в клетки ЦЭ, открепившиеся в ходе культивирования через 12 ч после посева, а–в — ЭЦ с види мой цтоплазмой после окраски АТ к BrdU (зеленый) и DAPI (синий), DIC — дифференци альный контраст;

В — динамика включения BrdU (через 12 ч после посева — синий, через 5 сут — зеленый), а — доля прикреплен ных к Лм клеток, б – доля клеток, открепившизся в ходе культиви рования ваются в больших скопле ниях, подсчет клеток в ко торых затруднен (рис. 14, А, в). Следует отметить, что клетки ЦЭ-с, выделенные через 5 ч после травмиро вания характеризуются са мой низкой пролифератив Рис. 15. Митотическая активность клеток ЦЭ при культи ной активностью (3 %). вировании на ламинине после окраски АТ к Н3-фосфогистону Анализ пролифера- (зеленый): а — клетки через 24 ч после посева;

б — клетки через тивной активности кле- 5 сут культивирования;

в — клетки ЦЭ через 21 сут культивирова ток, открепившихся в ходе ния. Красный — родамин-фаллоидин, синий — DAPI культивирования, показал, что способность включать BrdU — характеристика малых ЭЦ с плотно окрашивае мым DAPI ядром (2–3 мкм) и видимой цитоплазмой (рис. 14 Б, а–в). Доля этих кле ток ниже, чем в случае клеток, прикрепленных к ламинину, и достигает максимума 10 % для клеток ЦЭ, выделенных через 5 ч после травмирования. В ходе культиви рования клетки этого типа теряют ДНК-синтетическую активность (рис. 14, В, б).

Анализ митотической активности после окраски клеток АТ к Н3-фосфогистону подтвердил пролиферативную активность клеток ЦЭ при культивировании на Лм (рис. 15) — через 12 ч после посева выявляли отдельные клетки, а через 5 и 21 сут после посева были выявлены окрашенные малые клетки в колоние-подобных агре гатах, прикрепленные к ЦЦ-подобным клеткам.

Таким образом, оба типа малых ЭЦ, выявленные ра нее in vivo, сохраняют свою пролиферативную актив ность при культивировании на Лм, причем демонстри руют различный пролифера тивный потенциал — при крепленные к Лм клетки про являют более высокую спо собность к делению в те чение длительного време ни. По-видимому, эти клетки имеют другое сродство к Лм, что свидетельствует об ином, по сравнению с прикреплен Рис. 16. Окраска клеток ЦЭ антителами к Oct-4: А — окраска суспензий клеток in vivo;

Б — окраска клеток in vitro: ными клетками, наборе по верхностных рецепторов.

а — 6 сут. культивирования;

б — 15 сут культивирования Окраска клеток АТ к транскрипционному фактору Oct-4 — маркеру стволовых клеток in vivo и in vitro. Антителами к Oct-4 окрашиваются малые клетки с высоким ядерно цитоплазматическим отношением (рис. 16, А). При культивировании эти клетки окрашиваются в составе колоние-подобных агрегатов (рис. 16, Б). Поскольку Oct- у иглокожих не обнаружен, эти данные требуют дальнейших исследований.

Рис. 17. Демонстрация переходных форм клеток от клеток с высоким ядерно цитоплазматическим отношением до клеток с полярным распределением F-актином. Окраска родамин-фаллоидином (красный) и DAPI (синий) Возможность дифференцировки малых клеток в клетки других типов. При нято считать, что клетки ЦЖ являются клетками одной линии, однако этот вопрос остается открытым. В настоящее время надежных маркеров дифференцировки для клеток морских беспозвоночных не существует. Авторы опираются на изменение соотношения диаметра ядра к диаметру цитоплазмы клеток (Johansson et al., 2000;

Soderhall et al., 2003 и др.). На основе морфометрического анализа клеток после прикрепления к различным подложкам, мы проследили возможные переходные формы от клеток с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением к клеткам с полярным распределением F-актина. Переходные формы представлены на рис. 17.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ В работе исследован состав популяций клеток ЦЖ и ЦЭ морской звезды A.

rubens, предложена собственная классификация клеток, причем состав суспензий клеток ЦЭ охарактеризован впервые. Выявлены типы клеток, которые занимают пограничное положение между ЦЭ и целомической полостью. Это крупные агра нулоциты и гранулоциты и малые клетки с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением, характеризующиеся дискретно окрашенным ядром (1-го типа). Вы явлены значительные изменения доли этих клеток в составе ЦЭ и ЦЖ, вызванные травмированием. Обнаружена новая субпопуляция клеток ЦЭ, слабо связанных с ЦЭ, обогащенная малыми эпителиальными клетками 1 типа, в которой доля этих клеток достигает 50 %. Показана возможность миграции малых клеток 1 типа из со става ЦЭ в ЦЖ. Эти данные позволяют предположить, что, помимо «зрелых» ЦЦ, выходящих из состава ЦЭ в целомическую полость после травмирования, для вос полнения пула ЦЦ, предшественниками ЦЦ также могут являться клетки без выра женных признаков цитодифференцировки с высоким ядерно-цитоплазматическим отношением.

Анализ локализации малых клеток в составе ЦЭ, проведенный в случайно вы бранных фрагментах эпителия, выявил несколько позиций: в соединительной тка ни ЦЭ, в составе ЦЭ, не содержащего жгутиковых клеток, а также как большие скопления клеток в участках эпителия, обедненных жгутиковыми клетками. Эти данные показали необходимость более детального исследования всей поверхности луча звезды, устланного ЦЭ, для уточнения локализации малых клеток на поверх ности ЦЭ другими методами.

Иммунофлюоресцентный анализ показал, что только незначительная часть малых клеток характеризуется ДНК-синтетической и митотической активностью.

Эти данные подтверждаются результатами, полученными с помощью метода про точной цитометрии, который демонстрирует, что часть популяции малых ЭЦ в со ставе новой субпопуляции ЦЭ находятся на G2 стадии клеточного цикла. Следова тельно, часть популяции малых ЭЦ способна к пролиферации, а значительный пул клеток готов к выходу в целомическую полость и дальнейшей дифференцировке.

Таким образом, создана методическая основа для исследования клеточного цикла суспензий клеток ЦЭ.

Анализ клеток ЦЖ и ЦЭ при культивировании in vitro с помощью маркеров ДНК-синтетической и митотической активности показал сохранение нестимули рованной пролиферативной активности клеток ЦЭ в течение длительного времени (до двух месяцев), тогда так в работах других авторов максимальный срок деления в условиях культуры не превышает 10–14 дней. Важным результатом, создающим основы для культивирования и анализа клеток in vitro является факт обогащения популяции клеток малыми клетками при посадке клеток на ламинин и увеличение доли пролиферирующих клеток по сравнению с in vivo.

Способность окрашиваться АТ к транскрипционному фактору, маркеру ство ловых клеток, Oct-4, проявляющаяся у малых ЭЦ in vivo и при культивировании можно рассматривать только как предварительный результат, так как ген oct-4 у иглокожих не выявлен.

В вопросе о возможных путях дифференцировки малых клеток сделаны только первые шаги на уровне анализа морфологии клеток.

ВЫВОДЫ 1. ДНК-синтетической и митотической активностью характеризуются типа малых эпителиальных клеток с высоким ядерно-цитоплазматическим отно шением – клетки диаметром 4 мкм с дискретным распределением хроматина (ма лые эпителиоциты 1 типа), и клетки диаметром 2–3 мкм с конденсированным хро матином (малые эпителиоциты 2 типа). Часть популяции малых клеток находятся в G2 стадии клеточного цикла.

2. Малые эпителиоциты 1 типа обнаружены как в составе популяций ЦЦ, так и в составе популяций клеток ЦЭ. Обнаружена новая субпопуляция клеток ЦЭ, обогащенная малыми эпителиальными клетками 1 типа, доля этих клеток достига ет 50 %. Доля этих клеток изменяется в ответ на травмирование. Клетки этого типа способны выходить в целомическую полость из состава ЦЭ.

3. Малые эпителиоциты 1 типа локализуются в соединительной ткани ЦЭ, в составе ЦЭ, не содержащего жгутиковых клеток, а также как большие скопления клеток в участках эпителия, обедненных жгутиковыми клетками.

4. Выявлено обогащение популяции клеток ЦЭ малыми клетками при посад ке на ламинин. При культивировании клеток ЦЭ на ламинине наблюдается сохра нение пролиферативной активности в течение длительного времени.

5. Морфологические характеристики малых ЭЦ, пролиферативная актив ность, способность к миграции, поведение в культуре, сродство к ламинину, а так же способность окрашиваться АТ к транскрипционному фактору, маркеру стволо вых клеток, Oct-4 свидетельствуют о том, что малые ЭЦ проявляют свойства ство ловых клеток.

СПИСОК ПУБЛИКАЦИЙ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ:

Шарлаимова Н.С., Пинаев Г.П., Петухова О.А. Сравнительный анализ поведения и пролифера тивной активности в культуре клеток целомической жидкости и клеток различных тканей морской звез ды Asterias rubens L. полученных из нормальныхи травмированных животных// Цитология, 2010, Т. (4), С. 317–325.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А. Характеристика популяций клеток целомической жидкости и целомического эпителия морской звезды Asterias rubens L., способных прикрепляться и распласты ваться на различных субстратах.// Цитология, 2011, Т. 53 (11). С. 891–902.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А., Пинаев Г.П. Клетки целомического эпителия морской звезды Asterias rubens L. в культуре как тест на функциональное состояние ткани целомического эпителия после ранения // Международная конференция «Стволовые клетки, регенерация, клеточная терапия», 25–27 октября 2004 г. С. 948–949.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А., Пинаев Г.П. Оценка пролиферативной активности клеток в тка нях Asterias rubens L. на ранних сроках регенерации // Всероссийский симпозиум «Биология клетки в культуре», Санкт-Петербург, 17–19 октября 2006 г. С. 810.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А., Пинаев Г.П. Анализ адгезивных свойств клеток целомической жидкости морской звезды Asterias rubens L. На ранних сроках заживления раны // VIII научная сессия Морской Биологической Станции Санкт-Петербургского Университета, Санкт-Петербург, 8 февраля 2007 г. С. 93–94.

Шарлаимова Н.С. Морфо-функциональный анализ популяции клеток целомической жидко сти и тканей морской звезды Asterias rubens L. на ранних сроках регенерации // Двенадцатая Санкт Петербургская ассамблея молодых ученых и специалистов, 29 ноября 2007, С. 45.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А. Анализ адгезивных свойств клеток целомической жидкости и целомического эпителия морской звезды Asterias rubens L. На ранних сроках заживления раны // IX научная сессия Морской Биологической Станции Санкт-Петербургского Университета, 8 февраля 2008 г. С. 78-80.

Шарлаимова Н.С. Морфофункциональный анализ клеток целомической жидкости и целомиче ского эпителия морской звезды Asterias rubens L. в условиях первичной культуры // Тринадцатая Санкт Петербургская ассамблея молодых ученых и специалистов, 15 декабря 2008 г., С. 50.

Шаралаимова Н.С., Петухова О.А. Культивирование клеток целомической жидкости и целоми ческого эпителия морской звезды Asterias rubens L., выделенных на ранних сроках после нанесения раны // Школа-конференция для молодых ученых «Методы культивирования клеток». Санкт-Петербург, 6 октября 2008 г. С. 831.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А. Характеристика субпопуляции клеток, слабо связанных с цело мическим эпителием морской звезды Asterias rubens L. при культивировании на ламинине. // Всерос сийский симпозиум по биологии клетки в культуре «Культивируемые клетки как основа клеточных технологий», Санкт-Петербург, 12–14 октября 2009 г. С. 793–794.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А. Характеристика субпопуляции клеток целомического эпителия морской звезды Asterias rubens L. // Х научная сессия Морской Биологической станции СПбГУ. Санкт Петербург, 9 февраля 2009 г. С. Шарлаимова Н.С., Петухова О.А. Морфофункциональная характеристика новой субпопуляции клеток целомического эпителия морской звезды Asterias rubens L. // III Всероссийский с международ ным участием конгресс студентов и аспирантов-биологов «Симбиоз-Россия 2010». Нижний Новгород, 24–28 мая, 2010 г. С. 157–158.

Шарлаимова Н.С., Зенин В.В., Шабельников С.В., Петухова О.А. Субпопуляции клеток це ломического эпителия морской звезды Asterias rubens L., характеризующаяся высоким ядерно цитоплазматическим отношением.// ХII научная сессия Морской Биологической Станции Санкт Петербургского Университета. Санкт-Петербург, 4 февраля 2011 г. С. 80–81.

Шарлаимова Н.С., Петухова О.А. Пролиферирующие клетки целомического эпителия морской звезды Asterias rubens L. in vivo и in vitro// IV Всероссийский с международным участием конгресс сту дентов и аспирантов-биологов «Симбиоз-Россия 2011». Воронеж, 23–27 мая, 2011. С. 218–220.

Петухова О.А., Шарлаимова Н.С., Шабельников С.В. Гистологический анализ прогениторых кле ток целомического эпителия морской звезды Asterias rubens L.//II Всероссийская конференция с между народным участием и Школа для молодых специалистов и студентов «Современные проблемы эволю ционной морфологии животных» Санкт-Петербург, 17–19 октября 2011 г.

Список цитируемой литературы Горшков А.Н., Блинова М.И., Пинаев Г.П. (2009). Цитология, 51(8): 650–662. Ермак А.В., Один цова Н.А. (1996). Биология моря, 22(6): 371–377. Исаева В.В., Ахмадиева А.В., Александрова Я.Н., Шукалюк А.И. (2009). Онтогенез, 40(2): 83–97. Исаева В.В., Коренбаум Е.С. (1989). Биология моря, 6: 3–14. Козлова А.Б., Петухова О.А., Пинаев Г.П. (2006) Цитология, 48(3): 175–183. Коренбаум Е.С., Воробьев В.А. (1988). Биология моря, 1: 27–33. Одинцова Н.А. (2006). Цитология, 51(4): 367–372. Че репанова О.А., Калмыкова Н.В., Воронкина И.В., Арэ А.Ф., Горелик Ю.В., Пинаев Г.П. (2002). Ци тология, 44(2): 151–158. Candia Carnevali M.D., Bonasoro F. (2001а). Microsc Res Tech, 55(6): 365–8.

Candia–Carnevali M.D. (2006). ISJ, 3: 64–76. Cobb J.L. (1978). Cell Tiss. Res, 187: 515–523. Hendzel M.

J., Yi Wei, Mancini M.A., Van Hooser A., Ranalli T., Brinkley B.R., Bazett–Jones D.P., Allis C. D. (1997).

Chromosoma 106: 348–360. Hertzler P.L., McClay D.R. (1999). Dev Biol, 207: 1–13. Holm K., Dupont S., Skцld H., Stenius A., Thorndyke M. and Hernroth B. (2008). Exp. Biol, 211: 2551–2558. Isaeva, V.V.

(2011). In: Embryonic Stem Cells – Basic Biology to Bioengineering: 450 –478. Kanungo K.T. (1982). Biol.

Bull. 163: 438–452. Katow H.(1986). Exp Cell Res, 162: 401–410. Morgan T.H. (1901). Regeneration, P.:

348. Moss C., Hunter A.J., Thorndyke M.C. (1998). Phil. Trans. R. Soc. Lond. B, 353: 421–436. Naganuma T., Degnan B.M., Horikoshi K., Morse D.E. (1994). Mol. Mar. Biol. Biotechnol, 3(3): 131–40. Odintsova N.A., Khomenko A.V. (1993). Cytotechnology, 6: 49–54. Patruno M., Thorndyke M.C., Candia Carnevali M.D., Bonasoro F., Beesley P. (2001) Mar Biotechnol (NY), 3(1): 4–15. Pinsino A, Thorndyke MC, Ma tranga V. (2007). Cell Stress Chaperones, 12(4): 331–41. Schoenmakers H.J.N., Colenbrander P.H.J.M., Peute J., and van Oordt P.G.W.J. (1981). Cell Tissue Res, 217: 577–597. Sea Urchin Genome Sequencing Consortium. (2006). Stem Cells In Marine Organisms. [Ed.] Rinkevich, Matranga (2009) SpringerLink.

London. 367 P. Thorndyke M.C., Patruno M., Chen W.C., Beesley P.W. (2001). Symp Soc Exp Biol, 53:

107–20. Vanden Bossche J.P., JanGoux M. (1976). Nature, 261: 227–228. Winer B.J., Brown D.R., Mi chels K.M. (1991). New York: McGraw–Hill. 399 P.

Автор выражает искреннюю благодарность Отделу клеточных культур Института цитологии, а в особенности научному руководителю О.А. Петуховой, заведующему Отделом клеточных культур Г.П. Пинаеву, М.И. Блиновой, И.В. Воронкиной, а также всем, кто принимал участие в экспедициях — С.В. Шабельникову, Н.А. Шубину, Д.Е. Бобкову.

Автор выражает благодарность руководству и сотрудникам ББС ЗИН РАН, мыс Картеш.

Отдельную благодарность автор выражает сотрудникам Отдела клеточных культур — Т.Н. Ефремовой, А.М. Кольцовой, Е.С. Божокиной и О.А. Цаплиной Подписано в печать 15.12.2011. Формат 6088 1/ Бумага офсетная.

Усл.-печ. л. 1, Тираж 100 экз. Заказ № Отпечатано в соответствии с предоставленными материалами в ООО «Студия «НП-Принт», 190005, Россия, Санкт-Петербург, Измайловский пр., дом http://www.npprint.com/

 




 
2013 www.netess.ru - «Бесплатная библиотека авторефератов кандидатских и докторских диссертаций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.