авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ  БИБЛИОТЕКА

АВТОРЕФЕРАТЫ КАНДИДАТСКИХ, ДОКТОРСКИХ ДИССЕРТАЦИЙ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ

Pages:     | 1 ||

Сравнительная морфолого-физиологическая характеристика и реактивные особенности эпителиальных систем у животных разных уровней организации и человека: филогенетический аспект

-- [ Страница 2 ] --

Очевидно, эпителиальные клетки с базальными отростками в нервном слое представляют собой рецепторные элементы. На светооптическом уровне в кожном эпителии кишечнодышащих чувствительные клетки выявлены с помощью окраски метиленовым синим (Bullock, 1945) и импрегнации серебром (Siln, 1950).

Некоторые авторы рассматривают в качестве рецепторных элементов кожного эпителия кишечнодышащих мелкозернистые клетки (Knight-Jones, 1952;

Welsch, 1984).

В кишечном эпителии S. mereschkowskii (Пунин, 2001) и Glossobalanus marginatus (Siln, 1950) методом импрегнации серебром выявлены клетки открытого типа. В кожном и кишечном эпителиях представителей многих групп беспозвоночных нейроноподобные, эндокриноподобные и рецепторные клетки могут иметь на поверхности реснички или микроворсинки (Пунин, 1991, 2001;

Зайцева, 2006;

Zaitseva et al., 2004). Можно предполагать, что среди мерцательных клеток в кишечном эпителии S. mereschkowskii присутствуют рецепторные элементы.

У щетинкочелюстных в кожном эпителии функцию рецепции выполняют мерцательные клетки чувствительных участков (Касаткина, 1982), в кишечном эпителии специализированные рецепторные клетки не выявлены.

В изученных эпителиях беспозвоночных рецепция осуществляется с помощью нервных или эпителиальных клеток, имеющих реснички.

В клетках почечно-целомического эпителия канальцев нефрона у позвоночных и человека рецепцию осуществляют одиночные неподвижные «первичные» реснички (primary cilia) (Pazour, Witman, 2003;

Hildebrandt, Otto, 2005;

Abou Alaiwi et al., 2009).

Показано, что мембрана всех ресничек содержит рецепторы и ионные каналы, запускающие сигнальные механизмы контроля подвижности ресничек и реакции на внешние стимулы (Самойлов и др., 2006;

Satir, Christensen, 2007;

Shah et al., 2009).

Тканевая регуляция.

В составе кожного покрова C. convoluta отсутствуют специальные регуляторные элементы. По-видимому, функцию регуляции в данной тканевой системе выполняют нервные окончания.

В кожном и кишечном эпителиях A. macilenta специальные регуляторные клетки также не выявлены, очевидно, эту функцию осуществляют нейральные элементы интраэпителиальной нервной системы. Возможно, регуляторную функцию способны осуществлять непосредственно клетки кишечного эпителия, в цитоплазме которых вблизи базальной мембраны обнаруживаются мелкие электронноплотные гранулы.

В кожном и кишечном эпителиях A. lactifloreus обнаружены клетки, по видимому, регуляторные. Они содержат в базальной части электронноплотные гранулы, сходные по размеру и морфологии с гранулами пептидэргических нейросекреторных и эндокриноподобных клеток, описанных у позвоночных и беспозвоночных животных (Пунин, 2001). На основании присутствия нейротензин иммунореактивных элементов наличие эндокриноподобных клеток в кишечном эпителии у турбеллярий и немертин предполагалось (Пунин, 2001;

Zaitseva et al., 2004). Данные гистохимического исследования показывают присутствие в кожном и кишечном эпителиях разных видов немертин клеток открытого и закрытого типа (Зайцева, Маркосова, 2007), которые рассматриваются авторами как нервные элементы, способные осуществлять регуляцию функций железистых и ресничных эпителиальных клеток.

Зернистые клетки кожного эпителия S. mereschkowskii выделяют секрет как по экзокринному, так и по эндокринному типу, что дает основание рассматривать их как эндокриноподобные клетки (Столярова, Валькович, 2012). Мелкозернистые клетки, которым придается значение рецепторных, представляют собой, по видимому, особые рецепторно-эндокриноподобные клетки. В составе нервных волокон кожного эпителия выявлено пять типов гранул. Некоторые из них сходны с гранулами пептидэргических нейросекреторных и эндокриноподобных клеток.

Обнаруженные контакты нервных волокон и зернистых клеток свидетельствуют о нейральной регуляции функции зернистых клеток.

Выявленная локализация FMRFамид-иммунореактивного материала в некоторых клетках эпителия и клеточных отростках, идущих в нервный слой, подтверждает данные электронной микроскопии о наличии рецепторных и эндокриноподобных клеток. Иммунореактивность к FMRFамиду проявляют также нейроны, расположенные в нервном слое в основании эпителия.

Можно сделать вывод о существовании в кожном эпителии кишечнодышащих своеобразной нейро-эндокринной регуляторной системы, представленной рецепторными и рецепторно-эндокриноподобными клетками открытого типа и нервными элементами нервного слоя. У представителей кишечнодышащих – Saccoglossus и Ptychodera иммуноцитохимическими методами в зернистых клетках кожного эпителия, рассматриваемых как нейросекреторные, выявлено присутствие гонадотропин-рилизинг гормона (Cameron et al., 1999).

Типичные эндокринные клетки в кишечном эпителии S. mereschkowskii отсутствуют, как и у других видов кишечнодышащих (Welsch, Dilly, 1980;

Benito, Pardos, 1997). Однако показана локализация секреторных гранул зернистых клеток как в их апикальных, так и в базальных частях, что позволяет рассматривать эти клетки как выполняющие и экзокринную, и эндокринную функции (Столярова, 2011).

В кишечном эпителии S. mereschkowskii имеется интраэпителиальный нервный слой, в волокнах которого выявлены гранулы нескольких типов. Некоторые из этих гранул сходны с гранулами пептидэргических нейросекреторных и эндокриноподобных клеток.

По предположению Пунина (Пунин, 2001), кишечная регуляторная система кишечнодышащих образована элементами нервной системы. На основании выведения секрета из гранул нервных отростков через базальную мембрану в кровеносные синусы предполагается нейро-эндокринная секреция (Benito et al., 1993), регулирующая, по мнению авторов, секреторную и всасывающую активность эпителиальных клеток.

Таким образом, можно констатировать наличие в кишечном эпителии кишечнодышащих особой регуляторной нейро-эндокринной системы, состоящей из рецепторных клеток открытого типа, секреторных эндокриноподобных клеток и элементов нервного слоя. Обнаруженные участки контактов нервных волокон с базальными частями зернистых клеток и сократимыми частями мерцательных клеток свидетельствуют о регуляции секреции и сокращения мышечных пучков (Столярова, 2012).

Митозы и камбиальность.

Получены морфологические данные по митотическому делению эпителиальных клеток, свидетельствующие, что в изученных тканевых системах источником физиологической регенерации являются, в основном, мерцательные клетки, железистые клетки (у немертин) также могут вступать в деление. Специальные камбиальные клетки отсутствуют.

Отсутствие камбиальных элементов и поддержание клеточной популяции в кишечном эпителии за счет пролиферации дифференцированных, преимущественно, ресничных клеток имеет место у некоторых полихет (Кагановская, 1989;

Заварзин, Пунин, 1981) и двустворчатых моллюсков (Ушева, 1983;

Пунин, 1991). У полихет ресничные клетки способны к делению и изменению специализации (Brazil, 1902).

Железистые клетки кожного эпителия A. lactifloreus и S. mereschkowskii несут микроворсинки, содержат базальные тельца и корневые нити ресничек, проявляя мультифункциональность и сродство с мерцательными клетками. По-видимому, мерцательные и железистые клетки представляют собой близкородственные типы, отличающиеся направлением дифференцировки. В пользу этого заключения свидетельствует секреторная способность мерцательных клеток кожного покрова C. convoluta и S. mereschkowskii, кишечного эпителия A. lactifloreus, S. mereschkowskii и A. macilenta. По мнению Бенито и Пардоса (Benito, Pardos, 1997), в кожном эпителии кишечнодышащих все клетки являются мерцательными, по крайней мере, на ранних стадиях развития. У амфибий (Salamandra salamandra) в эмбриональном развитии в эпителии легкого появляются сначала ресничные клетки, затем – бокаловидные (Goniakowska-Witaliska, 1982).

Целомический эпителий щетинкочелюстных и вопрос о туловищно хвостовой перегородке. Щетинкочелюстные - животные, состоящие из эпителиев.

Изучение целомического эпителия A. macilenta позволило доказать отсутствие так называемой туловищно-хвостовой перегородки, которая была описана Донкастером (Doncaster, 1902). В настоящей работе использование серии срезов, проведенных в разных плоскостях, показало, что в области предполагаемой туловищно-хвостовой перегородки располагаются образованные целомическим эпителием оболочки кишки и гонад, контактирующие друг с другом в отдельных точках (рис. 5). Полученные результаты позволяют сделать заключение о наличии у щетинкочелюстных только двух истинных сегментов, что свидетельствует против сближения щетинкочелюстных с вторичноротыми (Касаткина, Столярова, 2006, 2008).

Уникальность тканевой организации щетинкочелюстных заключается в том, что тело щетинкочелюстных образовано тремя эпителиями: кожным, кишечным и эпителием мезодермального происхождения, дающим мышечные элементы стенки тела и целомическую выстилку (Столярова, Касаткина, 2009).

Рис. 5. Горизонтальный полутонкий срез в области задней кишки A. macilenta.

Толуидиновый синий. Видны задняя кишка (ЗКИ) и ее просвет (ПК), яичники (Я), компактная часть семенника (КС) и просвет семенника (ПС), целомический эпителий, образующий оболочки кишки и семенников (ЦЭ), целом (Ц), медиальная перегородка (МЕД), мышечный слой (МС). Об. 40х, ок. 10х Преобразование целомического эпителия в соматическую мускулатуру показано и для других групп животных (Benito, Pardos, 1997;

Долматов, 1998). Элементы нервной системы располагаются, преимущественно, интраэпителиально;

половые клетки входят в состав гонад, окруженных целомическим эпителием.

Соединительнотканные элементы представлены лишь тонким слоем коллагеновых волокон, разделяющим базальные мембраны эпидермиса и мышечного слоя.

Существование животных с тканевым составом, представленным исключительно эпителиями, является яркой иллюстрацией эволюционной первичности и системообразующей роли эпителиальных тканей.

Закономерности эволюционного развития эпителиальных систем.

Кожный эпителий.

Кожный покров C. convoluta и других Acoela характеризуется отсутствием базальной мембраны. Отграничение кожного покрова от подлежащих тканей достигается с помощью базальной мембраны, которая появляется в пределах класса турбеллярий.

Данные, полученные в настоящем исследовании, свидетельствуют о том, что на начальных этапах филогистогенеза у билатеральных животных развитие организации кожного эпителия происходило веерообразно в направлении образования разнообразных типов мультифункциональных клеток, в том числе эпителиально-мышечных, формирования межклеточных соединительных комплексов, развития примитивных механизмов регуляции с помощью нейральных и эндокриноподобных элементов. Мерцательные клетки кожного покрова изученных видов представляют собой мультифункциональные эпителиально-мышечные клетки.

С повышением организации увеличивается количество типов железистых клеток.

Мерцательные, а также железистые клетки у представителей разных групп имеют как признаки сходства, так и различия ультраструктурной организации, демонстрируя цитологические параллелизмы и дивергенции, обусловленные, соответственно, функциональной целесообразностью и видовой специфичностью. Появление многослойного кожного эпителия у щетинкочелюстных можно рассматривать как особую линию развития.

Сравнение с имеющимися данными литературы показывает, что у ланцетника (Branchiostoma lanceolatum), представляющего, по некоторым данным молекулярной филогении (Winchell et al., 2002), сестринскую группу по отношению к хордовым, кожный эпителий – однослойный кубический и снабжен кутикулой (Krause, 1923).

Происходит усиление защитной функции – клетки эпидермиса ланцетника содержат множество филаментов, сходных с таковыми клеток многослойного эпидермиса позвоночных (Bereiter-Hahn, 1984). У круглоротых и рыб эпидермис представляет собой многослойный плоский эпителий (Whitear, 1984). У амфибий в эпидермисе возникает роговой слой, который у рептилий, птиц и млекопитающих хорошо развит.

Появляются локализованные базально специальные камбиальные клетки.

В целом преобразование организации кожного эпителия шло по пути интенсификации защитной функции с помощью различных механизмов: выработки слизи, развития цитоплазматических филаментов, увеличения количества слоев клеток, образования специальных защитных структур – кутикулы или рогового слоя (Столярова, 2002).

Кишечный эпителий.

У C. convoluta пищеварительную функцию выполняет центральная паренхима, образованная пищеварительными клетками. У большинства видов турбеллярий выстилка кишки имеет базальную мембрану и эпителиальное строение.

Согласно данным настоящего исследования, на ранних этапах эволюции развитие кишечного эпителия шло по пути формирования мультифункциональных мерцательных эпителиально-мышечных, а также железистых клеток. У кишечнодышащих появляется развитая каемка из микроворсинок. Регуляция функций эпителиальных клеток осуществляется с помощью нейральных и эндокриноподобных элементов.

По известным из литературы данным, у ланцетника и круглоротых мерцательный покров в кишечном эпителии сохраняется, у рыб и всех вышестоящих животных имеется хорошо развитая щеточная каемка. У ланцетника в кишечном эпителии появляются эндокринные клетки (Ван Ноорден, Пирс, 1977;

Reinecke, 1981).

Преобразования ультраструктурной организации кишечного эпителия происходили в направлении формирования специализированных всасывающих каемчатых клеток и железистых клеток, продуцирующих слизь и пищеварительные ферменты, кишечной регуляторной эндокринной системы. Возникают камбиальные элементы и четко выраженные камбиальные зоны.

Целомический эпителий. У исследованных представителей кишечнодышащих и щетинкочелюстных, а также у других видов из этих групп целомический эпителий состоит из мультифункциональных эпителиально-мышечных клеток, которые могут иметь реснички. У Pterobranchia мезотелий представлен моноцилиарными эпителиально-мышечными клетками (Benito, Pardos, 1997). В ходе эволюции целомический эпителий утрачивает мерцательные реснички и сократимые структуры, осуществляя разграничительную и транспортную функции.

Мультифункциональность системы имеет большое значение, так как обеспечивает широкую приспособляемость вида (Воронцов, 2004). Представления Воронцова (2004) о мозаичности эволюции на уровне органов и принцип неравномерности темпов преобразований морфологических признаков справедливы для тканевого и клеточного уровней, где не удается проследить прямые линии эволюционных преобразований.

Классификация эпителиальных тканевых систем.

Полученные данные послужили для создания классификации эпителиальных тканей, объединяющей и дополняющей существующие классификации (таблица).

Установленное в настоящем исследовании наличие эпителиально-мышечных клеток во многих эпителиях у беспозвоночных свидетельствует об отсутствии разделения функций – ограничивающей и сократительной, что можно рассматривать как следствие слабой дифференцированности эпителиальных систем на разные функциональные элементы. По этому критерию вводятся следующие категории эпителиев: слабо дифференцированный (имеются эпителиально-мышечные клетки), дифференцированный (отсутствуют эпителиально-мышечные клетки), высоко дифференцированный (отсутствуют эпителиально-мышечные клетки, имеются специализированные отделы). В настоящей работе установлено участие некоторых клеток кожного эпителия S. mereschkowskii в формировании интраэпителиального нервного слоя, наличие интраэпителиального нервного слоя в кишечном эпителии A. macilenta. Наличие интраэпителиального нервного слоя, расположенного топографически в эпителии, является важной характеристикой эпителия. Эпителий, не обособленный от нервной системы, можно рассматривать как примитивный.

Таблица.

Предлагаемая морфологическая классификация эпителиальных тканевых систем (эпителиев) с включением критериев наличия или отсутствия эпителиально-мышечных клеток, наличия или отсутствия интраэпителиальной нервной системы Кол-во Кол-во рядов Высота клеток;

Наличие Наличие или Наличие слоев ядер наличие или базальной отсутствие интраэпителиа клеток отсутствие мембраны;

эпителиально- льной нервной клеточных наличие мышечных клеток, системы границ мерцательного наличие (нервного слоя покрова или специализированных или нервных кутикулы отделов стволов) Однослойн Погруженный Синцитиальный Слабо Примитивный ый Однорядный Клеточный Обособленный дифференцированны Ложномногоря й дный Плоский Мерцательный Дифференцированн Многорядный Кубический Кутикулярный ый Призматический Высоко дифференцированн ый Многослой Кутикулярный ный Плоский Неороговеваю Кубический щий Призматический Плоский Ороговевающи й Переходный Примечание. Курсив – типы эпителиев, встречающиеся только у беспозвоночных;

подчеркнуто – типы эпителиев, встречающиеся только у позвоночных;

выделено жирным – новые критерии или категории эпителиев.

ВЫВОДЫ 1. Мерцательные клетки кожного покрова изученных бескишечных турбеллярий, немертин и кишечнодышащих, кишечного эпителия немертин и кишечнодышащих представляют собой мультифункциональные мерцательные секреторно-всасывающие эпителиально-мышечные клетки, кишечного эпителия щетинкочелюстных – мерцательные секреторно-всасывающие клетки. Целомический эпителий кишечнодышащих и щетинкочелюстных образован эпителиально-мышечными клетками. Слизистые клетки имеют аналоги у вышестоящих животных и человека и являются универсальными, филогенетически древними типами.

2. Мерцательные клетки кожного покрова изученных бескишечных турбеллярий, немертин и кишечнодышащих, а также кишечного эпителия кишечнодышащих имеют стабилизирующую систему опорных элементов, представленную соединенными между собой корневыми нитями, базальными тельцами и цитоплазматическими филаментами. Этот своеобразный каркас имеет связь с областью межклеточных контактов.

3. Мерцательные покровные эпителии изученных морских беспозвоночных, обладающие щеточной каемкой и эндоцитозной активностью, способны к поглощению веществ. Они имеют структурно-функциональное сходство с абсорбирующим почечно-целомическим эпителием человека, что является ярким примером цитологических параллелизмов.

4. Мерцательные клетки кожного эпителия немертины Amphiporus lactifloreus и, вероятно, других немертин обладают уникальной особенностью – наличием центриолей и базальных телец ресничек и их скоплений в разных участках цитоплазмы. Наблюдается концентрация формирующихся базальных телец и центриолей, а также их предшественников в области комплекса Гольджи.

Центриолегенез у A. lactifloreus отличается от известного для исследованных в этом отношении позвоночных и беспозвоночных.

5. Регуляторные элементы в кожном и кишечном эпителиях немертины Amphiporus lactifloreus представлены эндокриноподобными клетками. В кожном и кишечном эпителиях кишечнодышащих имеется своеобразная нейро-эндокринная регуляторная система, представленная рецепторными и эндокриноподобными клетками и нервными элементами нервного слоя.

В изученных тканевых системах источником физиологической регенерации являются, в основном, мерцательные клетки, железистые клетки (у немертин) также могут вступать в деление.

6. Мостичные контакты кожного эпителия щетинкочелюстных не имеют аналогов среди известных типов межклеточных соединений и представляют собой новый тип межклеточных контактов. Их главные особенности: распространение вдоль всей поверхности контактирующих клеток, широкое расстояние между контактирующими мембранами – 40-50 нм, наличие связующих структур в виде «толстых» фибрилл диаметром 30 нм.

7. Кожные эпителии бескишечных турбеллярий, немертин и кишечнодышащих проявляют значительную способность к адаптации при гипотоническом воздействии.

Изменения ультраструктуры клеток почечно-целомического эпителия человека при усиленном транспорте белка носят неспецифический характер и сходны с изменениями, отмеченными при экспериментальном воздействии у исследованных животных.

Кожный эпителий щетинкочелюстных обладает уникальной способностью реагировать на радиоактивное загрязнение морской среды путем отрыва клеток.

Щетинкочелюстные могут рассматриваться как живые биоиндикаторы радиоактивного загрязнения морских акваторий.

8. У щетинкочелюстных туловищно-хвостовая перегородка отсутствует, картину перегородки могут создавать расположенные в этой области контактирующие в некоторых точках оболочки внутренних органов. Таким образом, тело щетинкочелюстных состоит только из двух истинных сегментов. Наличие особых мостичных контактов и митохондрий с трубчатыми кристами соответствует обособленному систематическому положению Щетинкочелюстных.

9. Преобразования ультраструктурной организации эпителиальных систем на ранних этапах филогистогенеза у билатеральных животных происходили веерообразно в направлении развития спектров мультифункциональных клеток, формирования простых форм регуляции. Имеющиеся сходства и различия в строении одноименных типов клеток определяются функциональной целесообразностью и видовой специфичностью, приводящими к параллелизмам и дивергенциям.

Эволюционное развитие кожного эпителия шло в направлении усиления защитной функции путем формирования железистых элементов, кутикулы, многослойности.

Развитие кишечного эпителия коррелирует с типом питания. Целомический эпителий в ходе развития утрачивает сократимые структуры, ресничный аппарат и специализируется на разграничительной и транспортной функциях.

10. Полученные в исследовании оригинальные данные позволили выделить дополнительные критерии классификации эпителиальных систем, послужившие основанием для создания новой расширенной классификации эпителиальных тканей.

К этим критериям относятся: наличие или отсутствие эпителиально-мышечных клеток, интраэпителиальной нервной системы. Предлагаются 4 новые категории эпителиев.

Список основных работ, опубликованных по теме диссертации 1. Касаткина А.П., Столярова М.В. Морфология, систематика и экология щетинкочелюстных Японского моря и сопредельных акваторий. Моногр.

Владивосток: Дальнаука, 2010. 260 с.

2. Атаманова (Столярова) М.В. Кожный и кишечный эпителии кишечнодышащих как этап филогенетического развития эпителиев хордовых // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1977. Т. LXXIII. Вып. 9. С. 55–61.

3. Атаманова (Столярова) М.В. Ультраструктурные особенности кожного эпителия Saccoglossus mereschkowskii (Enteropneusta) // Цитология. 1978. Т. XX. № 12. С.

1355–1359.

4. Нефротический синдром у детей (клинико-морфологические параллели) / Папаян А.В., Валькович Э.И., Зейтц Л.И., Цыбулькина Г.И., Савенкова Н.Д., Столярова М.В., Батюто Т.Д. // Педиатрия. 1985. № 12. С. 37-40.

5. Столярова М.В., Касаткина А.П. Ультраструктурная характеристика кожного эпителия щетинкочелюстных (Chaetognatha) // Доклады Академии Наук. 1988.

Т. 302. № 5. С. 1232–1233.

6. Столярова (Атаманова) М.В., Касаткина А.П. Ультраструктура кишечного эпителия у примитивного представителя щетинкочелюстных Aidanosagitta macilenta // Цитология. 1990. Т. 32. № 7. С. 671-676.

7. Валькович Э.И., Столярова М.В. Электронно-микроскопическое исследование реактивных изменений эпителия проксимальных канальцев почки при массивной протеинурии у детей // Морфология. 2001. Т. 119. № 1. С. 63-68.

8. Столярова М.В., Касаткина А.П. Сравнительное исследование межклеточных контактов у некоторых беспозвоночных //Доклады Академии Наук. 2001. Т. 376.

№ 5. С. 715-717.

9. Морфологическая оценка эффективности лечения глюкокортикоидами массивной протеинурии / Валькович Э.И., Столярова М.В., Скворцова М.Ю., Батюто Т.Д. // Морфология. 2003. Т.124. № 5. С. 45-46.

10. Касаткина А.П., Столярова М.В. Два новых рода (Paraeukrohnia, Praeukrohnia) и четыре новых вида морских стрелок (Chaetognatha) из юго западной части Берингова моря // Биология моря. 2006. Т. 32. № 3. С. 181-187.

11. Валькович Э.И., Столярова М.В. Ультраструктурные особенности изменений тубулярного гистиона в системе реабсорбции белка в нефроне при массивной протеинурии // Морфология. 2005. Т. 127. Вып. 2. С. 62–66.

12. Валькович Э.И., Столярова М.В. Реактивные изменения в системе нефрона при массивной протеинурии у детей // Морфология. 2009. Т. 136. Вып. 4. С. 27 28.

13. Столярова М.В., Валькович Э.И. Гистохимическая характеристика и функциональное значение железистых клеток кожного эпителия некоторых беспозвоночных – филогенетический аспект // Морфология. 2010. Т. 138. Вып.

5. С. 77-85.

14. Столярова М.В., Валькович Э.И. Ультраструктурные особенности тканевой адаптации у некоторых животных и человека // Морфология. 2010. Т. 138. Вып.

6. С. 44-47.

15. Столярова М.В. Электронномикроскопическое исследование кишечного эпителия Saccoglossus mereschkowskii (Enteropneusta, Hemichordata) // Цитология.

2011. Т. 53. № 5. С. 433-443.

16. Атаманова (Столярова) М.В., Касаткина А.П. Сравнительное исследование межклеточных контактов в кожном и кишечном эпителиях некоторых беспозвоночных // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1983. Т. 85. № 9. С. 102.

17. Kassatkina A.P., Stolarova M.V. Histological examination of the chaetognatha morphological structure in the region of a supposed trunk-tail septum // Zoosystematica Rossica. 2008. V. 17. N 2. P. 61-70.

18. Valkovich E.I., Stolarova M.V. Ultrastructural changes of the epithelium of proximal tubules of kidneys under massive proteinuria // Abstracts of Symposium Phenotypic changes in epithelial development. Anatomical Society of Great Britain and Ireland.

London, 2000. P. 19.

19. Stolarova M.V., Kasatkina A.P. The ultrastructural pattern of skin epithelium in Chaetognats: presence of an unusual type of cell junction // Abstracts of Symposium Phenotypic changes in epithelial development. Anatomical Society of Great Britain and Ireland. London, 2000. P. 19-20.

20. Stolarova M.V., Kassatkina A.P. The histology analysis of Chaetognathen morphological anomalies from the radiactivity region of the Chajma bay (the Japan/east sea) // Sixth IOC/WESTPAC Int. Sci. Symp. Challenges for Marine Science in the Western Pacific. Hangzhou, China, 2004. P. 98.

21. Клинико-морфологическое изучение нефротического синдрома у детей по материалам биопсий почек / Валькович Э.И., Папаян А.В., Батюто Т.Д., Столярова М.В., Зейтц Л.И. // Вопросы общей и частной онкоморфологии [под ред.]. М., Л.: Медицина. 1985. С. 51-54.

22. Атаманова (Столярова) М.В. Кожный и кишечный эпителии Saccoglossus mereschkowskii и вопрос о «немертиновом» эпителии // Сборник научных Трудов «Эволюционная морфология беспозвоночных животных». Л., 1976. С. 20–22.

23. Атаманова (Столярова) М.В. Взаимоотношения между эпителиальными и мышечными элементами в кожном покрове некоторых беспозвоночных // IX Всесоюзный съезд анатомов, гистологов и эмбриологов. Минск, 1981. С. 31-32.

24. Столярова М.В., Касаткина А.П. Сравнительное исследование межклеточных контактов в кожном и кишечном эпителиях беспозвоночных // V Всесоюзная конференция «Биология клетки», часть 2. Тбилиси, 1987. С. 881-883.

25. Валькович Э.И., Столярова М.В. Ультрамикроскопические основы реактивности эпителия почечных канальцев // Сборник научных трудов «Актуальные вопросы экспериментальной и клинической морфологии». Томск, 2002. Вып. 2. С. 196-197.

26. Валькович Э.И., Столярова М.В. Электронномикроскопическое исследование реактивных изменений системы реабсорбции белка в нефроне при массивной протеинурии у детей // 4-й Международный научный симпозиум «Применение современных методов анализа в изучении структуры и функции клетки».

Архангельск, 2002. С. 14–17.

27. Столярова М.В. К происхождению и эволюции эпителиальных тканей // Сборник статей, посвященный 70-летию кафедры гистологии и эмбриологии Санкт Петербургской государственной педиатрической медицинской академии. СПб, СПбГПМА, 2002. С. 45-49.

28. Столярова М.В. Ультраструктурная организация и возможные механизмы обновления кожного эпителия Amphiporus lactifloreus (Nemertini) // Международный симпозиум «Клеточные, молекулярные и эволюционные аспекты морфогенеза». Москва, Ин-т биол. разв. им. Н.К. Кольцова РАН, 2007. С.

153-155.

29. Столярова М.В., Касаткина А.П. Морфологические отклонения и аномалии морфогенеза у морских стрелок (Chaetognatha) под влиянием радиоактивного загрязнения // Международный симпозиум «Клеточные, молекулярные и эволюционные аспекты морфогенеза». Москва, Ин-т биол. разв. им. Н.К.

Кольцова РАН, 2007. С. 155-157.

30. Касаткина А.П., Сергеев А.Ф., Столярова М.В. Влияние антропогенных факторов (радиоактивного загрязнения) и естественной флуктуации морской среды на ткани морских стрелок (Chaetognatha) // Сборн. научных трудов «Проблемы и перспективы современной науки». Томск, 2008. Вып. 1. С. 27-28.

31. Столярова М.В. Кожный покров бескишечной турбеллярии Convoluta convoluta как пример примитивной эпителиальной тканевой системы // Сборник научных трудов «Проблемы и перспективы современной науки». Томск, 2008. Вып. 1. С.

45-46.

32. Столярова М.В., Касаткина А.П. Значение эпителиальных тканей в общей организации животных // Сборник научных трудов «Проблемы и перспективы современной науки». Томск, 2009. Т. 2. № 1. С. 22-23.

33. Столярова М.В. Нейро-мышечные взаимоотношения в кишечном эпителии у кишечнодышащих (Enteropneusta) // Морфология. 2012. Т.141. № 3. С. 150-151.

34. Столярова М.В., Валькович Э.И. Зернистые клетки кожного и кишечного эпителиев кишечнодышащих (Enteropneusta) как регуляторные элементы // Морфология. 2012. Т.141. № 3. С. 151.

35. Столярова М.В. Гистология, гистохимия и ультраструктура кишечного эпителия Amphiporus lactifloreus (Nemertini) // Тезисы докл. VIII Всероссийской конференции с международным участием, посвященной 220-летию со дня рождения академика К.М. Бэра «Механизмы функционирования висцеральных систем». Институт физиологии им. И.П. Павлова РАН. С.Петербург, 2012. С. 221 222.

36. Столярова М.В., Касаткина А.П. Способ определения радиоактивного загрязнения акваторий // Патент на изобретение № 2441215. Опубликовано:

27.01.2012. Бюл. № 3, 18 с.

Список цитируемой литературы Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж. и др. Межклеточная адгезия и внеклеточный матрикс //Молекулярная биология клетки. [Пер. с англ.] М.: Мир, 1987. Т. 3. С. 201 – 243.

Беклемишев В.Н. О паразитных турбелляриях Мурманского моря. I. Acoela //Тр. имп.

Петрогр. общ. естествоисп., 1915. Т. 43, в. 4. С. 103-172.

Беклемишев В.Н. Морфологическая проблема животных структур. (К критике некоторых из основных понятий гистологии) // Изв. научн.-иссл. инст. при Пермск. унив., 1925. Т. 3, прилож. 1. С.

1-74.

Беклемишев В.Н. Основы сравнительной анатомии беспозвоночных. М.: Наука, 1964. Т. 1.

Проморфология. 432 с. Т. 2. Органология. 446 с.

Белан Т.А. Экологические исследования в заливе Стрелок и бухте Рифовой // Сб.

Гидрометеорологические процессы на шельфе: оценка воздействия на морскую среду. Тр.

ДВНИГМИ. Владивосток: Дальнаука, 1998. С. 125-131.

Березинская Т.Л., Малахов В.В. Ультраструктура туловищного и хвостового целома Serratosagitta pseudoserratodentata (Chaetognatha) //Зоол. журн., 1993. Т. 72, вып. 5. С. 36-47.

Ван Ноорден C., Пирс А.Г.Е. Локализация иммунореактивности к инсулину, глюкагону и гастрину в кишечнике ланцетника (Branchiostoma lanceolatum)// Эволюц. эндокринология поджелудочной железы. Л.: Наука,1977. С. 97-104.

Винниченко Л.Н. Сравнительная ультраструктура нефрона. Атлас. Л.: Наука, 1980. 136 с.

Воронков П.П., Уралов Н.С., Черновская Е.Н. Основные черты гидрохимического режима прибрежной зоны Баренцева моря в районе Центрального Мурмана // Тр. Мурм. биол. ст., 1948. Т. I.

С. 39-101.

Воронцов Н.Н. Эволюция. Видообразование. Система органического мира // Избран. труды.

М.: Наука, 2004. 365 с.

Долматов И.Ю. Происхождение и становление соматической мускулатуры в филогенезе Deuterostomata // Известия АН, сер. биол., 1998. № 6. С. 645-657.

Дробышева И.М. Камбиальность эпидермиса у турбеллярий // Морфологические основы филогенетики плоских червей. Тр. Зоол. инст. АН СССР. Спб, 1991. Т. 241. С. 53-87.

Дробышева И.М. Ацентриолярный способ образования базальных телец в эпидермисе Friedmaniella sp. (Prolecithophora, Plathelminthes) // Докл. РАН, 1996. Т. 346, № 3. С. 415-418.

Дробышева И.М. (Drobysheva I.M.). Replication of basal bodies during ciliogenesis in the epidermis of Prolecithophora and Lecithoepitheliata (Plathelminthes)// Belg. J. Zool., 2010. V. 140 (Suppl.).

P. 127- Дробышева И.М., Зайцева О.В., Мамкаев Ю.В. Электронно-микроскопическое исследование мерцательных клеток в покровах Lineus ruber (Heteronemertini) из Белого моря// Мат-лы 2-й Междунар. конф. «Экологические исследования беломорских организмов». СПб, 2007. С. 36-38.

Дробышева И.М., Тимошкин О.А. Ультраструктурные особенности эпидермиса у байкальской турбеллярии Geocentrophora wagini (Lecithoepitheliata, Plathelminthes)// Цитология, 2006.

Т. 48, № 3. С. 184-198.

Ежова О.В., Малахов В.В. Эпителиально-мышечные клетки в кишечнике представителя полухордовых Saccoglossus mereshkowskii (Hemichordata, Enteropneusta) // Докл. РАН, 2007. Т. 14, № 1. С. 137-139.

Заварзин А.А. Об эволюционной динамике тканей //Арх. биол. наук, 1934. Т. 36, сер. «А», в. 1.

С. 3-65.

Заварзин А.А. Основы частной цитологии и сравнительной гистологии многоклеточных животных. Л.: Наука, 1976. 411 с.

Заварзин А.А. Сравнительная гистология. СПб: Изд-во СПб унив-та, 2000. 518 с.

Заварзин А. А., Пунин М. Ю. Кинетика репродукции и дифференцировки клеток в эпителии кишки и ее производных у афродитид. I. Эпителий средней кишки // Цитология, 1981. Т. 23, вып. 3.

С. 283-291.

Зайцева О.В. Нервные клетки в эпителии пищеварительного тракта брюхоногих моллюсков // Докл. РАН, 2006. Т. 408, № 2. С. 280-282.

Зайцева О.В., Маркосова Т.Г. NADF-диафоразная активность в периферической нервной системе беломорских немертин // Ученые записки Казанского гос. ун-та, 2007. Т. 149, кн. 3. С. 142 147.

Закс М.Г., Соколова М.М. О механизме адаптации к опреснению среды у некоторых литоральных организмов // Журн. эвол. биохим. физиол., 1965. Т. I, № 6. С. 538-542.

Иванов А.В. О соотношении между Protostomia и Deuterostomia и система животного мира // Зоол. журн., 1976. Т. 55, № 8. С. 1125-1137.

Иванов А.В., Мамкаев Ю.В. Ресничные черви (Turbellaria), их происхождение и эволюция.

Филогенетические очерки. Л.: Наука, 1973. 221с.

Кагановская Э. А. Некоторые морфофункциональные особенности пищеварительной системы полихет // Арх. анат., 1989. Т. 96, вып. 4. С. 84-92.

Карупу В.Я. Удобный способ импрегнации аргирофильных волокон. Арх. анат., 1952,. Т. 62, вып. 6. С. 88-89.

Касаткина А.П. Щетинкочелюстные морей СССР и сопредельных вод. Л.: Наука, 1982. 136 с.

Кондратьев Г.В., Малиновская Е.Ю., Шадрин А.Б. Использование поликлональных антител для изучения белков эпителиальных микрофиламентов Sagitta sp // Тезисы докл. студ. научн. конф.

СПбГПМА, 2005. СПб, СПбГПМА. С. 28-29.

Кононский А.И. Гистохимия. Киев. «Вища школа», 1976.

Кусакин О.Г., Дроздов А.Л. Филема органического мира. Том I. Пролегомены к построению филемы. СПб: Наука, 1994. 282 с.

Малахов В.В. Высшие уровни (до классов включительно) классификации царства ANIMALIA (Животные) // Система В.В. Малахова. М., МГУ, 2003. URL: BioDiv - Malakhov's Phyla & Classes www.zin.ru/BioDiv/classall.asp?Node=C10590&LATNAM (Дата обращения: 10.12.2011).

Мамкаев Ю.В. Очерки по морфологии бескишечных турбеллярий // Тр. Зоол. инст. АН СССР.

Л., 1967. Т. 44. С. 26-108.

Мамкаев Ю.В., Маркосова Т.Г. Электронномикроскопическое исследование паренхимы представителей бескишечных турбеллярий // Эволюционная морфология беспозвоночных. Тр. Зоол.

инст. АН СССР. Л., 1979. Т. 84. С. 7-12.

Маркосова Т.Г. Электронно-цитохимическое исследование эндоцитоза и внутриклеточного пищеварения в эпидермальных клетках Convoluta convoluta (Turbellaria, Acoela) // Морфология ресничных червей. Тр. Зоол. инст. АН СССР. Л., 1989. Т. 195. С. 26-35.

Машанский В.Ф., Боброва И.Ф., Дроздов А.Л., Рижамадзе Н.А. Консерватизм в ультраструктуре мембранных компонентов митохондрий // Структура и функции биологических мембран. М., 1975. С. 45-58.

Пирс Э. Гистохимия [пер. с англ.]. М.: Изд. иностр. лит., 1962. 962 с.

Попова Н.В. Ультраструктура нервной системы и органов чувств бескишечной турбеллярии Convoluta convoluta (Turbellaria, Acoela) // Автореф. дис. …канд. биол. наук. Л., 1987. 18 с.

Пунин М.Ю. Гистологическая организация кишечных эпителиев приапулид, брахиопод, двустворчатых моллюсков и полихет. СПб: Наука, 1991. 232 с.

Пунин М.Ю. Кишечная регуляторная система беспозвоночных животных и ее предполагаемая эволюция у многоклеточных. Тр. Зоол. инст. РАН. СПб, 2001. Т. 290. 165 с.

Райкова О.И. Сравнительное исследование ультраструктуры бескишечных турбеллярий. Дисс.

…канд. биол. наук. Л., 1988.

Райкова О.И. Ультраструктура нервной системы и органов чувств бескишечных турбеллярий // Морфология ресничных червей. Тр. Зоол. инст. АН СССР. Л., 1989. Т. 195. С. 36-46.

Райкова О.И. О филогенетическом значении ультраструктурных признаков турбеллярий // Морфологические основы филогенетики плоских червей. Тр. Зоол. инст. АН СССР. Спб, 1991. Т. 241.

С. 26-52.

Райкова О.И. Сравнительное исследование ультраструктуры покровов бескишечных турбеллярий // Цитология, 1992. Т. 34, № 1. С. 43-49.

Райкова О.И. (O.I. Raikova). Neuroanatomy of basal bilaterians (Xenoturbellida, Nemertodermatida, Acoela) and its phylogenetic implications. Department of Biology, bo Akademy University. bo, Finland, 2004. 86 p.

Ромейс Б. Микроскопическая техника. М.: Изд-во иностр. лит., 1953. 718 с.

Самойлов В.О., Бигдай Е.В., Руденко Я.Н. Механизмы хемосенсорной чувствительности самого тонкого анализатора химических агентов // Тезисы IV Международного конгресса "Слабые и сверхслабые поля и излучения в биологии и медицине", 2006. С. 76.

www.biophys.ru/archive/congress2006/abs-p76.

Серавин Л.Н. Изменение резистентности морской турбеллярии Convoluta borealis Sabuss в условиях опреснения // Научн. докл. высш. шк., 1959. Сер. биол., № 2. С. 50-52.

Сивинцев Ю.В., Высоцкий В.Л., Данилян В.А. Радиоэкологические последствия радиационной аварии на атомной подводной лодке в бухте Чажма // Атомная энергия, 1994. Т. 76, вып. 2. С. 158-160.

Сивинцев Ю.В., Вакуловский С.М., Васильев А.П., Высоцкий В.Л., Губин А.Т., Данилян В.А, Кобзев В.И., Крышев И.И., Лавковский С.А., Мазокин В.А., Никитин А.И., Петров О.И., Пологих Б.Г., Скорик Ю.И. Техногенные радионуклиды в морях, омывающих Россию.

Радиоэкологические последствия удаления радиоактивных отходов в арктические и дальневосточные моря // Белая книга – 2000. М.: изд. АТ, 2005. 720 с.

Темерева Е.Н., Малахов В.В. Форониды имеют эпителиально-мышечные клетки в кишечнике // Докл. Акад. наук, 2002. Т. 386, № 4. С. 570-573.

Ушева Л. Н. Гистоморфология и пролиферация клеток эпителия задней кишки у приморского гребешка // Биология моря, 1983. Т. 3. С. 17-24.

Хлебович В.В. О скорости гибели некоторых пресноводных и морских беспозвоночных в солоноватой воде различных концентраций // Докл. Акад. наук, 1960. Т. 135, № 3. С. 732-735.

Хлебович В.В. Критическая соленость биологических процессов. Л.: Наука, 1974. 120 с.

Хлопин Н. Г. Эволюция эпителиальных тканей и их взаимоотношения с внешней и внутренней средой // Арх. биол. наук, 1934. Т. 36, сер. «А», вып. 1. С. 65-94.

Чернышев А.В. Сравнительная морфология, систематика и филогения немертин. Дисс. …докт.

биол. наук. Владивосток, 2008. 366 с.

Abou Alaiwi W.A., Lo S.T., Nauli S.M. Primary cilia: highly sophisticated biological sensors // Sensors, 2009. V. 9, N 9. P. 7003-7020.

Balser E.J., Ruppert E.E. Structure, ultrastructure, and function of the preoral heart-kidney in Saccoglossus kowalevskii (Hemichordata, Enteropneusta) including new data on the stomochord // Acta zool.

(Stockh.)., 1990. V. 71. P. 235-249.

Barr F.A. Cilia – the masterplan //J. Cell Science, 2008. V. 121, N 1. P. 5-6.

Barrington E.J.W. Observations on feeding and digestion in Glossobalanus minutus // Quart. J. Micr.

Sci., 1940. V. 82, N 326. P. 227-260.

Barrington E. J. W. The biology of Hemichordates and Protochordates. San Francisco, Freeman a.

Co., 1965. 176 P.

Bedini C., Papi F. Fine structure of the turbellarian epidermis // Biology of the Turbellaria. N.Y. a. o., Mc Graw Hill, 1974. P. 108-147.

Benito J. Estudio histolgico y ultrastructural de la pared del cuerpo de Glossobalanus minutus (Kowalewsky) (Enteropneusta) // Bol. R. Soc. Espaola Hist. Nat. (Biol.), 1975a. V. 73. P. 207-228.

Benito J. Estudio histoqu’mico de la epidermis de Glossobalanus minutus (Kowalewsky).

(Ptychoderidae, Enteropneusta, Hemichordata) // Bol. R. Soc. Espaola Hist. Nat. (Biol.), 1975b. V. 73. P.

229-235.

Benito J., Fernndez I., Pardos F. Fine structure of the hepatic sacculations of Glossobalanus minutus (Enteropneusta, Hemichordata) // Acta Zool. (Stockh.), 1993. V. 74, N 2. P. 77-86.

Benito J., Pardos F. Hemichordata // Microscopic Anatomy of Invertebrates. New-York: Wiley-Liss, 1997. V. 15. P. 15-101.

Bereiter-Hahn J. Cephalochordata // Biology of the integument [Bereiter-Hahn J., Matoltsy A. G., Richards K. S. (eds)]. Berlin: Springer, 1984. V. 1. P. 817-824.

Brazil L. Notes sur l’intestine de la pectinaire (Lagis koreni Malmgren) // Arch. Zool. Exp. Gen., 1902. Ser. 3, N 10. P. 1-7.

Bromham L.D., Degnan B.M. Hemichordates and deuterostome evolution: robust molecular phylogenetic support for a hemichordate + echinoderm clade // Evol. Dev., 1999. V. 1, N 3. P. 166-71.

Brunskill N.J. Mechanisms of albumin uptake by proximal tubular cells // Am. J. Kidney Dis., 2001.

V. 37, N 1, Suppl 2. P. 17-20.

Bullock T. H. The anatomical organization of the nervous system of Enteropneusta // Quart. J. Micr.

Sci., 1945. V. 86. P. 55-111.

Cameron C.B., Garey J.R., Swalla B.J. Evolution of the chordate body plan: new insights from phylogenetic analyses of deuterostome phyla // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2000. V. 97, N. 9. P. 4469-4474.

Cameron C.B., Mackie G.O., Powell J.F., Lescheid D.W., Sherwood N.M. Gonadortopin-releasing hormone in mullberry cells of Saccoglossus and Ptychodera (Hemichordata, Enteropneusta) // Gen. Comp.

Endocrinol., 1999. V. 114, N. 1. P. 2-10.

Cavalier-Smith T. Eukaryote Kingdoms: seven or nine? // Biosystems. 1981. V. 14. P. 461-484.

Christensen E.I., Verroust P.J., Nielsen R. Receptor-mediated endocytosis in renal proximal tubule // Pflugers Arch., 2009. V. 458, N 6. P. 1039-1048.

Cifrian B., Garca-Corrales P., Martnez-Alos S. Intracytoplasmic ciliary elements in epidermal cells of Syndesmis echinorum and Paravortex cardii (Platyhelminthes, Dalyellioida) // J. Morphol., 1992. V.

213. P. 147 - 157.

Cook C.E., Jimnez E., Akam M., Sal E. The Hox gene complement of acoel flatworms, a basal bilaterian clade // Evol. Dev., 2004. V. 6, N 3. P. 154-163.

Dawe H. R., Farr H., Gull K. Centriole/basal body morphogenesis and migration during ciliogenesis in animal cells // J. Cell Sci., 2007. V. 120. P. 7-15.

Delage Y. tudes histologiques sur ler Planaires Rhabdocoeles Acoeles (Convoluta schulzii [O.

Schm.]) // Arch. Zool. exp. gn., 1886. Sr. 2. T. 4, N 1-2. P. 109-160.

Dirksen E.R. Centriole and basal body formation during ciliogenesis revisited // Biol. Cell, 1991. V.

72. P. 31-38.

Doncaster L. On the development of Sagitta, with notes on the anatomy of the adult // Quart. J.

Microsc. Sci., 1902. V. 46. P. 1-267.

Dorey A.E. The organization and replacement of the epidermis in acoelous turbellarians // Quart. J.

Micr. Sci., 1965. V. 106, pt. 2. P. 147-172.

Duvert M., Bouligand Y., Salat C. The liquid cristalline nature of the cytoskeleton in epidermal cells of the chaetognath Sagitta setosa // Tissue Cell, 1984. V. 16. P. 469-481.

Duvert M., Gros D., Salat C. The junctional complex in the intestine of Sagitta setosa (Chaetognatha): An ultrastructural study // J. Cell Sci., 1980a. V. 42. P. 227-246.

Duvert M., Gros D., Salat C. Ultrastructural studies of the junctional complex in the musculature of the arrowworm Sagitta setosa (Chaetognatha) // Tissue Cell, 1980b. V. 12. P. 723-738.

Duvert M., Salat C. Fine structure of muscle and other components of the trunk of Sagitta setosa (Chaetognatha) // Tissue Cell, 1979. V. 11. P. 217-230.

Duvert M., Salat C. Ultrastructural studies of the visceral muscles of chaetognaths // Acta Zool., 1995. V. 76. P. 75-87.

Eakin R.M., Westfall J.A. Fine structure of the eye of a Chaetognath // J. Cell Biol., 1964. V. 21, N 1. P. 115-132.

Erber A., Riemer D., Bovenschulte M., Weber K. Molecular Phylogeny of Metazoan Intermediate Filament Proteins // J. Mol. Evol., 1998. V. 47. P. 751–762.

Fisher F. M., Gramer N. M. New observations on the feeding mechanism in Lineus ruber (Rhynchocoela) // Biol. Bull., 1967. V. 133, N 2. P. 464.

Fisher F. M., Oaks J. A. Evidence for a nonintestinal nutritional mechanism in the rhynchocoelan, Lineus ruber // Biol. Bull., 1978. V. 154, N 2. P. 213-225.

Franzn, Afzelius B.A. The ciliated epidermis of Xenoturbella bocki (Platyhelminthes, Xenoturbellida) with some phylogenetic considerations // Zool. Scripta, 1987. V. 16. P. 9-17.

Gibson R. The nutrition of Paranemertes peregrina (Rhynchocoela: Hoplonemertea). II. Observations on the structure of the gut and proboscis, site and sequence of digestion, and food reserves // Biol. Bull., 1970. V. 139, N 1. P. 92-106.

Gibson R. Histochemical observations on the localization of some enzymes associated with digestion in four species of Brazilian nemerteans // Biol. Bull., 1974. V. 147, N 2. P. 352-368.

Gomori G. Microscopic histochemistry. Chicago: Univ. Press, 1952. 273 p.

Goniakowska-Witaliska L. Development of the larval lung of Salamandra salamandra L // Anat.

Embryol., 1982. V. 164. P. 113-137.

Gontcharoff M., Lechenault H. Ultrastructure et Histochimie des Glandes sous pidermiques chez Lineus Ruber et Lineus Viridis // Histochimie, 1966. Bd. 6, H. 4. S. 320-335.

Haselton A.T., Yin C., Stoffolano J.G. FMRFamide-like immunoreactivity in the central nervous system and alimentary tract of the non-hematophagous blow fly, Phormia regina, and the hematophagous horse fly, Tabanus nigrovittatus // J. Insect Science, 2008. V. 8, Art. 65, 17pp., available online:

insectscience.org/8.65.

Hendelberg J. The system of epidermal ciliary rootlets in Turbellaria // Hydrobioilogia, 1981. V. 84, N 1. P. 240.

Hendelberg J., Hedlund K.-O. Electron microscope studies of the junctions between ciliary rootlets and the orientation of ciliar- axonemes in the epidermis of acoelous turbellarians // J. Ultrastruct. Res., 1973.

V. 44. P. 440.

Hildebrandt F., Otto E. Cilia and centrosomes: a unifying pathogenic concept for cystic kidney desease? // Nature Reviews Genetics, 2005. V. 6. P. 928-940.

Jennings J. B. Observations on the nutrition of the rhynchocoelan Lineus ruber (O. F. Mller) // Biol.

Bull., 1960. V. 119, N. 2. P. 189-196.

Jennings J. B. A histochemical study of digestion and digestive enzymes in the rhynchocoelan Lineus ruber // Biol. Bull., 1962. V. 122, N. 1. P. 63-72.

Jennings J. B., Gibson R. Observations on the nutrition of seven species of rhynchocoelan worms // Biol. Bull., 1969. V. 136, N. 3. P. 405-433.

Junoy J., Montalvo S., Roldn C., Garsia-Corrales P. Ultrustructural study of the bacillary, granular and mucoid proboscidial gland cells of Riseriellus occultus (Nemertini, Heteronemertini) // Acta Zool. (Stockholm), 2000. V. 81. P. 235-242.

Knight-Jones E. W. On the nervous system of Saccoglossus cambrensis (Enteropneusta) // Philos.

Trans. Roy. Soc. London, 1952. Ser. B. V. 236, N 634. P. 315-354.

Krause R. Mikroscopische Anatomie der Wirbeltiere in Einzeldarstellungen. Berlin u. Leipzig: W. de Gruyter u. Co., 1923. Abt. 4.

Latta H., Maunsbach A.B., Maden S.C.J. Cilia in different segments of the rat nephron. // J.

Biophys. Biochem. Cytol., 1961. V. 11, N 1. P. 248-252.

Luther A. Studien ber Acle Turbellarian aus dem Finnischen Meeresbusen // Acta Soc. Fauna Flora fenn., 1912. V. 36, N 5. S. 1-60.

Macha N., Petersen J. A. A histochemical study of epidermal mucous secretion in Enteropneusta (Hemichordata) // Acta histochem., 1969. V. 32, N 2. P. 305-309.

Mashansky V.F., Drozdov A.L. The principle of conservatism at the level of cellular ultrastructures and the problem of the appearance of life on Earth // Lectures in theoretical biology. Tallinn, 1988. P. 113 120.

Matus D.Q., Halanych K.M., Martindale M.Q. The Hox gene complement of a pelagic chaetognath, Flaccisagitta inflate // Integr. Comp. Biol., 2007. V. 47, N 6. P. 854-864.

Montalvo S., Junoy J., Roldn C., Garca-Corrales P. Ultrastructural study of sensory cells of the proboscidial glandular epithelium of Riseriellus occultus (Nemertea, Heteronemertea) // J. Morphology, 1996. V. 229, issue 1. P. 83–96.

Mwinyi A., Bailly X., Bourlat S.J., Jondelius U., Littlewood D.T. J., Podsiadlowski1 L. The phylogenetic position of Acoela as revealed by the complete mitochondrial genome of Symsagittifera roscoffensis // BMC Evol. Biology, 2010. 10:309.

Nrrevang A. On the mucous secretion from the proboscis in Harrimania kupfferi (Enteropneusta) // Ann. N. Y. Acad. Sci., 1965. V. 118, Art. 24. P. 1052-1069.

Novelli A. La comportement fonctionnel des cellules dans les tissus dmontr par une nouvelle mthode de coloration // Bull. Micr. Appliquee, 1954. Ser. 2, T. 4, N 7-8. P. 89-94.

Norenburg J.L. Structure of the nemertine integument with consideration of its ecological and phylogenetic significance // Am. Zool., 1985. V. 25. P. 37-51.

Oaks J.A. Ultrastructure of Lineus ruber (Rhynchocoela) epidermis // Tissue and Cell, 1978. V. 10, N 2. P. 227-242.

Oschman J.L. Microtubules in the subepidermal glands of Convoluta roscoffensis (Acoela, Turbellaria) // Trans. Amer. Micr. Sci., 1967. V. 86, N 2. P. 159-162.

Parry D.A. Srtucture and function of the gut in Spadella cephaloptera and Sagitta setosa // J. Marin.

Biol. Assoc. U. K., 1944. V. 26. P. 16-36.

Pazour G.J, Witman G.B. The vertebrate primary cilium is a sensory organell // Current Opinion in Cell Biology, 2003. V. 15. P. 105-110.

Pedersen K.J. Сytological and cytochemical observations on the mucous cells of Convoluta convoluta // XVI Intern Congr. Zool., Proceedings, 1963. Vol. 1. P. 82.

Pedersen K.J. Some morphological and histochemical aspects of nemertine connective tissue // Z.

Zellforsh. Mikrosk. Anat., 1968. Bd. 90. S. 570-595.

Reinecke M. Immunohistochemical localization of polypeptide hormones in endocrine cells in the digestive tract of Branchiostoma lanceolatum // Cell Tissue Res.,1981. Vol. 210. P. 445-456.

Reisinger E. Nemertini. Schnurwrmer // Biol. d. Tiere Deutschlands, 1926. Lf. 17, Tl. 7. S. 1-24.

Reisinger E. Ultrastrukturforschung und Evolution // Physico-Medica. Wrzburg, 1968. S. 1-50.

Rieger M. Morphology of the Turbellaria at the ultrastructural level // Hydrobioilogia, 1981. V. 84. P.

213-229.

Roe P., Crowe J.H., Crowe L.M., Wickham D.E. Uptake of amino acids by juveniles of Carcinonemertes errans (nemertea). Comp. Biochem. Physiol., 1981. Part A: Physiology. V. 69, issue 3. P.

423-427.

Ruiz-Trillo I., Riutort M., Littlewood D.T., Herniou E.A., Bagua J. Acoel flatworms: earliest extant bilaterian Metazoans, not members of Platyhelminthes // Science, 1999. V. 283, N 5409. P. 1919 1923.

Ruppert E.E., Carle K.J. Morphology of metazoan circulatory system // Zoomorphology, 1983. V.

103. P. 193-208.

Satir P., Christensen S.T. Overview of Structure and Function of Mammalian Cilia // Annu. Rev.

Physiology, 2007. V. 69. P. 377-400.

Sempere L.F., Martinez P., Cole C., Bagua J., Peterson K.J. Phylogenetic distribution of microRNAs supports the basal position of acoel flatworms and the polyphyly of Platyhelminthes // Evol.

Dev., 2007. V. 9, N 5. P. 409-415.

Sergeev A.F., Goryachev V.A., Soyfer V.N., Rubtsov N.P., Matveev V.I., KotenkoV.A., Gorin I.S., Makarov V.G. The oceanography aspect of radiation situation in Chazma bay of Japan sea // CREAMS-2000. Proc. Intern. Symp. on Oceanography of the East Asian Marginal Seas. Vladivostok, 2000. P. 39.

Shah A.S., Ben-Shahar Y., Moninger T.O., Kline J.N., Welsh M.J. Motile Cilia of Human Airway Epithelia Are Chemosensory // Science, 2009. V. 325, N 5944. P. 1131-1134.

Shinn G. L. Chaetognatha // Microscopic Anatomy of Invertebrates. New-York: Wiley-Liss, 1997.

V. 15. P. 103-220.

Siln L. On the nervous system of Glossobalanus marginatus Meek (Enteropneusta) // Acta Zool.

(Stockh.), 1950. rg. 31. P. 149-175.

Sorokin S. P. Reconstructions of centriole formation and ciliogenesis in mammalian lungs // J. Cell Sci., 1968. V. 3. P. 207-230.

Stephens G. C., Schinske R. A. Uptake of amino acids by marine invertebrates // Limnology and Oceanography, 1961. V. 6, N 2. P. 175-181.

Telford M. J., Holland P. W. H. The Phylogenetic Affinities of the Chaetognaths: A Molecular Analysis // Mol. Biol. Evol., 1993. V. 10, N 3. P. 660 – 676.

Telford M.J., Lockyer A.E., Cartwright-Finch C., Littlewood D.T. Combined large and small subunit ribosomal RNA phylogenies support a basal position of the acoelomorph flatworms // Proc. Biol.

Sci., 2003. V. 270, N 1519. P. 1077-83.

Turbeville J.M., Ruppert E.E. Epidermal muscles and peristaltic burrowing in Carinoma tremaphoros (Nemertini): correlates of effective burrowing without seg-mentation // Zoomorphology, 1983.

V. 103. P. 103-120.

Turbeville J.M., Ruppert E.E. Comparative ultrustructure and evolution of nemertines // Amer.

Zool., 1985. V. 25. P. 53-71.

Turbeville J.M., Schultz J.R., Raff R.A. Deuterostome phylogeny and the sister group of the chordates: evidence from molecules and morphology // Mol. Biol. Evol., 1994. V. 11, N 4. P. 648-655.

Tyler S. Distinctive features of cilia in metazoans and their significance for systemstics // Tissue Cell, 1979. V. 11, N 3. P. 385-400.

Tyler S. Epithelium – the primary building block for metazoan complexity // Integr. Comp. Biol., 2003. V. 43. P. 55-63.

Verroust P.J., Kozyraki R. The roles of cubilin and megalin, two multiligand receptors, in proximal tubule function: Possible implication in the progression of renal desease // Curr. Opin. Nephrol. Hypertens., 2001. V. 10. P. 33-38.

Welsch U. Hemichordata // Biology of the Integument [J. Bereiter-Hahn, A.G. Maltotsy and K.S.

Richards (eds.)]. V. I. Invertebrates. Berlin: Springer, 1984. P. 790-799.

Welsch U., Dilly P.N. Elektronenmikroskopische Beobachtungen am Epithel des Verdauungstraktes der Hemichordaten. Ein Beitrag zur Evolution des Darmtraktes niederer deuterostomier (Hemi- und Protochordaten) und seiner nervsen und hormonalen Steuerung // Zool. Jb. Anat. Jena, 1980. Bd. 104, H. 1, N 5. S. 25-39.

Welsch U, Storch V. Fine structure of the coelomic epithelium of Sagitta elegans (Chaetognatha) // Zoomorphology, 1982. V. 100. P. 217-222.

Welsch U, Storch V. Fine structural and enzyme histocytochemical observations on the epidermis and the sensory cells of Sagitta elegans (Chaetognatha) // Zoomorhhology, 1983a. V. 100. P. 217-222.

Welsch U, Storch V. Enzyme histochemical and electron microscopical observations on the digestive tract of Sagitta elegans // Zool. Jb. Anat., 1983b. Bd. 109. S. 23 – 33.

Whitear M. The skin of fishes including Cyclostomes. 2. Epidermis // Biology of the integument [Bereiter-Hahn J., Matoltsy A. G., Richards K. S. (eds)]. Berlin: Springer, 1984. V. 2. P. 8-38.

Winchell C.J., Sullivan J., Cameron C.B., Swalla B.J., Mallatt J. Evaluating Hypotheses of Deuterostome Phylogeny and Chordate Evolution with New LSU and SSU Ribosomal DNA Data // Mol.

Biol. Evol., 2002. V. 19, No 5. P. 762–776.

Zaitseva O.V., Marcosova T.G., Smirnov R.V., Soboleva V.S. Investigation of cell composition of the intestinal nervous system in gastropods, nemertines and priapulids // Proc. Zool. Inst. Russ. Acad. Sci., 2004. V. 300. P. 175-184.

Zoya C., Morigi M., Remuzzi G. Proteinuria and phenotypic change of proximal tubular cells // J.

Amer. Soc. Nephrol., 2003. V. 14. P. S36-S41.



Pages:     | 1 ||
 




 
2013 www.netess.ru - «Бесплатная библиотека авторефератов кандидатских и докторских диссертаций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.